DSpace logo

Please use this identifier to cite or link to this item: http://repositorioinstitucional.uea.edu.br//handle/riuea/2408
Full metadata record
DC FieldValueLanguage
dc.contributor.authorSantos, Izabel Cristina Conceição dos-
dc.date.available2020-03-19-
dc.date.available2020-03-20T00:15:32Z-
dc.date.issued2012-07-24-
dc.identifier.urihttp://repositorioinstitucional.uea.edu.br//handle/riuea/2408-
dc.description.abstractThe aquatic biota is constantly exposed to a large number of toxic substances from several emission sources. Among the sources of water pollution, there is leachate. Leachate is a liquid highly toxic, resulting from the decomposition of waste, and represents an environmental problem of global scale. Even the most pristine areas are not free from this pressure. The city of Parintins-Am, for example, also has suffered the impact of such pollution. The aggravating fact this particular situation is that this region is surrounded by a number of bodies of water, for example, Lake Macurany. This is one of the main lakes that surround the island of Parintins, as being of vital importance to their preservation. Therefore, the quality of these environments can potentially being compromised by the discharge of leachate. The present study aimed to evaluate the effect of leachate from the public Parintins, on tambaqui, Colossoma macropomum (Cuvier, 1818), after 96h of exposure in the laboratory and after exposure for 24 and 48, in situ in Lake the Macurany. In both situations the hematological parameters, ionic, enzymatic and genotoxic effects were determined and evaluated for use as potential biomarkers of contamination by leachate. To evaluate the effect of leachate under laboratory exposure, we used 32 individuals of the species C. macropomum distributed in groups of 8 specimens exposed to individual tanks with a capacity of 6 liters, containing water slurry in three different dilutions (1:100, 1:1000 and 1:10,000) for a period of 96 hours of exposure. Another group of eight specimens were exposed only to well water, considered as the control group. The environmental impact assessment of the presence of toxic dumps in Lake Macurany was performed in situ by exposure of specimens of C. macropomum, in cages with a volume of 9L in two different exposure times, 24 and 48. Under the experimental conditions used were 30 individuals in group 3 specimens exposed at a point downstream of the trash, and another group of 30 subjects was exposed at a point upstream of the trash. The laboratory exposure resulted in anemia, as evidenced by the decrease in hemoglobin concentration, hematocrit and red blood cells count. Glucose levels increased in animals exposed to different concentrations of manure showing that these animals went through a period of stress. Plasma levels of Na+, K+ and Cl- also increased in the groups exposed to different concentrations of leachate, suggesting that the slurry can interfere with processes regulating ion in specimens of tambaqui. Exposure to the slurry caused severe liver damage assessed indirectly by increased concentration of alanine and aspartate aminotransferase and alkaline phosphatase. We also observed an increase in the levels of cholinesterase, suggesting disturbances in the transmission of nerve impulses in these animals. Increases in enzymatic parameters were proportional to the concentration of slurry, indicating a dose-dependent response. The results obtained by means of genotoxic parameters, comet assay and nuclear abnormalities, indicate that exposure to concentrations tested manure causes increased damage to genetic material and erythrocytic nuclear abnormalities. The in situ exposure in Lake Macurany downstream of Parintins-Am public trash, also triggered a series of changes in all parameters. For haematological parameters, decreased values of hematocrit and no significant difference in hemoglobin concentration, and the number of circulating red blood cells was increased only in the specimens exposed for 24 hours downstream to streamline the carrying of oxygen. The blood glucose concentration also increased in these animals, suggesting that the animals went through a period of stress. Plasma levels of Na+, K+ and Cl- and levels of enzymes ALT, AST, ALP and Che increased in specimens from the point downstream tip, showing again that the lake contamination is capable of triggering biochemical and physiological disturbances. The results for comet assay and nuclear abnormalities suggest genotoxicity for exposure in situ. Generally, exposure of C. macropomum to different concentrations of manure and contamination of Lake Macurany was sufficient to cause serious physiological and biochemical disturbances, thus compromising the health of this species. The results suggest that the hematological parameters, ionic, enzymatic, comet assay and erythrocytic nuclear abnormalities analyzed for the species Colossoma macropomum proved to be a potential biomarkers of contamination by leachate. Keywords: leachate; biomarkers; Colossoma macropomum; Parintins; Lake Macurany.pt_BR
dc.languageporpt_BR
dc.publisherUniversidade do Estado do Amazonaspt_BR
dc.rightsAcesso Abertopt_BR
dc.rightsAtribuição-NãoComercial-SemDerivados 3.0 Brasil*
dc.rights.urihttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/br/*
dc.subjectChorumept_BR
dc.subjectBiomarcadorespt_BR
dc.subjectColossoma Macropomumpt_BR
dc.subjectParintinspt_BR
dc.titleBiomarcadores de Efeito do Chorume da Lixeira Pública de Parintins-Am em tambaqui (Colossoma Macropomum)pt_BR
dc.typeDissertaçãopt_BR
dc.date.accessioned2020-03-20T00:15:32Z-
dc.contributor.advisor-co1Oliveira, Christiane Patrícia Feitosa de-
dc.contributor.advisor-co1Latteshttp://lattes.cnpq.br/5903186582080296pt_BR
dc.contributor.advisor1Val, Adalberto Luis-
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/2747150211073176pt_BR
dc.contributor.referee1Val, Adalberto Luis-
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/2747150211073176pt_BR
dc.contributor.referee2Duncan, Wallice Luiz Paxiúba-
dc.contributor.referee2Latteshttp://lattes.cnpq.br/8755090875733287pt_BR
dc.contributor.referee3Val, Vera Maria Fonseca de Almeida e-
dc.contributor.referee3Latteshttp://lattes.cnpq.br/3821690425847852pt_BR
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/4233960755073428pt_BR
dc.description.resumoA biota aquática está constantemente exposta a um grande número de substâncias tóxicas, oriundas de diversas fontes de emissão. Dentre as fontes de poluição aquática, destaca-se o chorume. O chorume é um líquido altamente tóxico, resultante da decomposição do lixo e representa um problema ambiental de escala global. Mesmo as regiões mais prístinas não estão livres dessa pressão. A cidade de Parintins-Am, por exemplo, também vem sofrendo o impacto deste tipo de poluição. O agravante nesta situação específica é que esta região é circundada por inúmeros corpos de água como, por exemplo, o Lago do Macurany. Este é um dos principais lagos que circundam a Ilha de Parintins, sendo de vital importância quanto a sua preservação. Portanto, a qualidade destes ambientes pode estar sendo potencialmente comprometida pela descarga de chorume. O presente estudo teve como objetivo avaliar o efeito do chorume, proveniente da lixeira pública de Parintins, em tambaqui, Colossoma macropomum (Cuvier, 1818), após 96h de exposição em laboratório e após exposição, por 24 e 48h, in situ no Lago do Macurany. Em ambas situações os parâmetros hematológicos, iônicos, enzimáticos e genotóxicos foram determinados e avaliados para utilização como potenciais biomarcadores de contaminação pelo chorume. Para avaliação do efeito do chorume, sob exposição laboratorial, utilizou-se 32 exemplares de C. macropomum distribuídos em grupos de 8 exemplares expostos em aquários individuais, com capacidade para 6 litros, contendo água+chorume em três diferentes diluições (1:100, 1:1000 e 1:10000) por um período de 96h de exposição. Outro grupo de 8 espécimes foram expostos somente à água do poço, sendo considerado o grupo controle. A avaliação do impacto ambiental da presença de despejos tóxicos no Lago do Macurany foi realizada através da exposição in situ de exemplares de C. macropomum, em gaiolas com volume de 9L, em dois diferentes tempos de exposição, 24 e 48h. Nas condições experimentais utilizou-se 30 indivíduos distribuídos em grupo de 3 exemplares expostos em um ponto a jusante da lixeira, outro grupo de 30 indivíduos foi exposto em um ponto a montante da lixeira. A exposição laboratorial resultou num quadro de anemia, comprovada pela diminuição na concentração de hemoglobina, hematócrito e número de células vermelhas. Os níveis de glicose aumentaram nos animais expostos às diferentes concentrações de chorume evidenciando que esses animais passaram por um período de estresse. Os níveis plasmáticos de Na+, K+ e Cl- também aumentaram nos grupos expostos às diferentes concentrações de chorume, sugerindo que o chorume pode interferir nos processos de regulação iônica em espécimes de tambaqui. A exposição ao chorume causou sérios danos hepáticos avaliados indiretamente pelo aumento na concentração das enzimas alanina e aspartato aminotransferases e fosfatase alcalina. Foi observado também, um aumento nos níveis de colinesterase, sugerindo distúrbios na transmissão dos impulsos nervosos nesses animais. O aumento dos parâmetros enzimáticos foram proporcionais ao aumento da concentração de chorume, indicando efeito dosedependente. Os resultados obtidos por meio dos parâmetros genotóxicos, ensaio cometa e anormalidades nucleares, indicam que a exposição às concentrações testadas de chorume causa aumento de danos no material genético e de anormalidades nucleares eritrocíticas. A exposição in situ no Lago do Macurany, a jusante da lixeira pública de Parintins-Am, também desencadeou uma série de alterações em todos os parâmetros analisados. Nos parâmetros hematológicos houve diminuição nos valores de hematócrito e não houve diferença significativa na concentração de hemoglobina, quanto ao número de eritrócitos circulantes houve o aumento somente nos espécimes expostos a jusante por 24h para dinamizar o carreamento de oxigênio. A concentração de glicose sanguínea também aumentou nesses animais, sugerindo que os animais passaram por um período de estresse. Os níveis plasmáticos de Na+, K+ e Cle os níveis das enzimas ALT, AST, FA e Che aumentaram nos espécimes do ponto a jusante lixeira, mostrando mais uma vez que a contaminação da referido lago é capaz de desencadear distúrbios bioquímico-fisiológico diversos. Os resultados para ensaio cometa e anormalidades nucleares sugerem genotoxicidade para a exposição in situ. De um modo geral, a exposição de C. macropomum às diferentes concentrações de chorume e à contaminação do Lago do Macurany foi suficiente para promover sérios distúrbios fisiológicos e bioquímicos, comprometendo assim a saúde dessa espécie. Os resultados obtidos sugerem que os parâmetros hematológicos, iônicos, enzimáticos e genotóxicos analisados para a espécie Colossoma macropomum se mostraram potenciais biomarcadores de contaminação por chorume. Palavras- chave: chorume; biomarcadores; Colossoma macropomum; Parintins; Lago do Macurany.pt_BR
dc.publisher.countryBrasilpt_BR
dc.publisher.programPós- Graduação em Biotecnologia e Recursos Naturaispt_BR
dc.relation.referencesAAS, E. et al. PAH metabolites in bile, citochrome P450 1A and DNA adducts as environmental risk parameters for chronic oil exposure: a laboratory experiment with Atlantic cod. Aquat. Toxicol., v. 51, p. 241–58, 2000. ABNT. Associação Brasileira de Normas Técnicas. NBR 15088: Ecotoxicologia aquática – toxicidade aguda – método de ensaio com peixes. São Paulo, 2004. ADAMS, S.M. et al. Application of bioindicators in assessing the health of fish populations experiencing contaminant stress. In: MCCARTHY, J.F.; SHUGART, L.R. (Eds.) Biomarkers of Environ. Contam., Boca Raton: Lewis Publishers, 1990. AHMAD, I. et al. Modulatoryrole of copper on _-naphthoflavone-induced DNA damage in European eel (AnguillaAnguilla L.). Ecotox. Environ. Safe., n. 71, p. 886-12, 2008. ALKINDI, A.Y.A. et al. Endocrine, osmoregulatory, respiratory and hematological parameters in flounder exposed to the water soluble fraction of crude oil. J. Fish Biol., v. 49, p. 1291-305, 1996. ALMEIDA-VAL, V. M. F.; VAL, A. L. Adaptação de peixes aos ambientes de criação. In: Val, A. L. & Honczarynk, A. (Eds.). Criando Peixes na Amazônia. Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia, Manaus, Amazonas. p. 45-59, 1995. ALPUCHE-GUAL L.; GOLD-BOUCHOT, G. Determination of esterase activity and characterization of cholinesterases in the reef fish Haemulon plumieri. Ecotox. Environ. Safe., n. 71, p. 787-97, 2008. AL-SABTI, K.; METCALFE, C. D. Fish micronuclei for assessing genotoxicity in water. Mutat. Res., v. 343, n. 2-3, p. 121-35, 1995. ARAÚJO-LIMA, C.A.; GOULDING, M. Os frutos do tambaqui: ecologia, conservação e cultivo na Amazônia. Sociedade Civil Mamirauá. Tefé, Amazonas. Brasília: CNPQMinistério da Ciência e Tecnologia, 1998. 94 AYLLÓN, F.; GARCIA-VAZQUEZ, E. Induction of micronuclei and other nuclear abnormalities in European minnow Phoxinus phoxinus and mollie Poecilia latipinna: as assessment of the fish micronucleus test. Mutat. Res., v. 467, p. 177–86, 2000. AYLLÓN, F.; GARCIA-VAZQUEZ, E. Micronuclei and other nuclear lesions as genotoxicity indicators in rainbow trout Oncorhynhus mykiss. Ecotox. Environ. Safe., n. 49, p. 221-5, 2001. AZEVEDO FILHO, J. D. M.; LIMA, C. D. Degradação ambiental do Lago do Macurany (Parintins-Am): por uma política de recuperação a partir da educação ambiental. 61 Reunião Anual da SBPC. Manaus, 2009. BARSIENE, J. et al. Investigation of micronuclei and other nuclear abnormalities in peripheral blood and kidney of marine fish treated with crude oil. Aquat. Toxicol., v. 78, p. 99-104, 2006. BEAUVAIS, S.L. et al. Cholinergic and Behavioral Neurotoxicity of Carbaryl and Cadmium to Larval Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). Ecotox. Environ. Safe., n. 49, p 84-90, 2001. BELPAEME, K. et al. Cytogenetic studies of PCB77 on brown trout (Salmo truttafario) using the micronucleus test and the alkaline comet assay, Mutagenesis, v. 11, p. 485–92, 1996. BEYER, J. et al. Contaminant accumulation and biomarker responses in flounder (Platichthys flesus L.) and Atlantic cod (Gadus morhua L.) exposed by caging to polluted sediments in Søfrjorden. Norway Aquat. Toxicol., v. 36, p.75 – 98, 1996. BOON J.P. et al. Changes in levels of hepatic biotransformation enzymes and haemoglobin levels in female plaice (Pleuronectes platessa) after oral administration of a technical polychlorinated biphenyl mixture (Clophen A40). Sci. Total Environ., v. 114, p 113-33, 1992. 95 BRENTANO, D.M. Desenvolvimento e aplicação do teste de toxicidade crônica com daphnia magna: avaliação de efluentes tratados de um aterro sanitário. 2006. Dissertação (Mestrado em Engenharia Ambiental), Universidade Federal de Santa Catarina, Santa Catarina, 2006. BUSCHINI, A. et al. Comet assay and micronucleus test in circulating erythrocytes of Cyprinus carpio specimens exposed in situ to lake waters treated with disinfectants for potabilization. Mutat. Res., v. 557, p. 119 – 29, 2004. CAMARGO, M. M. P.; MARTINEZ, C. B. R. Histopathology of gills, kidney and liver of a Neotropical fish caged in an urban stream. Neotrop. Ichthyol., v. 5, p. 327-336, 2007. CAMARGO, M.M.P.; MARTINEZ, C.B.R. Biochemical and physiological biomarkers in Prochilodus lineatus submitted to in situ tests in an urban stream in southern Brazil. Environ. Toxicol. Phar., v. 21, p. 61 – 9, 2006. CARRASCO, K. R.; TILBURY, K. L.; MYERS, M. S. Assessment of the piscine micronucleus test as an in situ biological indicator of chemical contaminant effects. Can. J. Fish Aquat. Sci., n.47, p. 2123-36, 1990. CARVALHO, C.S., FERNANDES, M. N. Effect of temperature on copper toxicity and hematological responses in the neotropical fish Prochilodus scrofa at low and high pH. Aquaculture, v. 251, p. 109-17, 2006 CAVALCANTE, A.L.M. Parâmetros Sanguíneos de Tilápia (Oreochromis nilotic) Monitoramento Ambiental do Chumbo. 2009. Dissertação (Mestrado em Ciências: Saúde Pública) Escola Nacional de Saúde Pública Sergio Arouca. Rio de Janeiro, 2009. ÇAVAS, T.; ERGENE-GÖZÜKARA, S. Induction of micronuclei and nuclear abnormalities in Oreochromis niloticus following exposure to petroleum refinery and chromium processing plant effluents. Aquat. Toxicol., v 74, p. 264–71, 2005. 96 CERQUEIRA, C.C.C; FERNANDES, M.N. Gill fish recovery after Cooper exposure andblood parameter responses in the tropical fish Prochilodus scrofa. Ecotox. Environ. Safe., v. 52, p. 83-91, 2002. CHAMPE, P.C.; HARVEY, R.A. Bioquímica Ilustrada. 2ed. Porto Alegre: Artes médicas, 1996. CHILTON, J.; CHILTON, K.. A Critique of risk modeling and risk assessment of municipal landfills based on U.S. Environmental Protection Agency techniques. Waste Manage. Res., n. 10, p. 505-16, 1992. CHRISTENSEN, T.H. et al. Biogeochemistry of landfill leachate plumes. Appl. Geochem., n. 16, p. 659–718, 2001. CHU, L.M.; CHEUNG, K.C.; WONG, M.H. Variations in the chemical properties of landfill leachate. Environ. Manage., v.1, n.18, 105–12, 1994. CRAFFORD, D.; AVENANT-OLDEWAGE, A. Bioaccumulation of non-essential trace metals in tissues and organs of Clarias gariepinus (sharptooth catfish) from the Vaal River system: strontium, aluminium, lead and nickel. Water SA (Online), v. 36, n. 5, p.621-40, 2010. CONAMA - Conselho Nacional do Meio Ambiente - Resolução nº 357/2005. <www.mma.gov.br/conama/res/res05/res35705.pdf> Acesso em: 05/12/2011. CPRM- Companhia de Pesquisa de Recursos Minerais- Serviço Geológico do Brasil. Avaliação da qualidade das águas subterrâneas da cidade de Parintins – Am. Manaus, 2005. DAS, B.K.; MUKHERJEE, S.C. Chronic toxic effects of quinalphos on some biochemical parameters in Labeo rohita (Ham.). Toxicol. Lett., v. 114, p. 11-8, 2000. 97 DELLALI, M. et al. The use of acetylcholinesterase activity in Ruditapes decussates and Mytilus galloprovincialis in the biomonitoring of Bizerta lagoon. Comparative Biochem. Pysiol., v. 130, p. 227-35. 2001. DOMINGOS, F. C. V. Biomarcadores de contaminação ambiental em peixes e ostras de três estuários brasileiros e cinética de derivados solúveis do petróleo em peixes. 2006. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas, Biologia Celular e Molecular), Universidade Federal do Paraná, 2006. EL-DEMERDASH, F.M.; ELAGAMY, E.L. Biological effects in Tilapia nilotica fish as indicators of pollution by cadmium and mercury. Inter. J. Environ. Health Resear., n. 9, p. 173-86, 1999. ERDTMANN, B. Effects of chronic exposure to coal in wild rodents (ctenomys torquatus) evaluated by multiple methods and tissues. Mutat. Res., v. 470, p. 39-51, 2000. EVANS, D. H.; PIERMARINI, P. M.; CHOE, K. P. The multifunctional fish gill: dominant site of gas exchange, osmoregulation, acid–base regulation, and excretion of nitrogenous waste. Physiol. v. 85, p. 97-177, 2005. FAIRBAIRN, D.W; OLIVE, P.L; ONEILL; K.L. The Comet assay: a comprehensive review. Mutat Res., v. 339, p. 37–59, 1995. FENT, K. Ecotoxicological problems associated with contaminated sites. Toxicol. Lett., v. 140, p. 353- 65, 2003. FONTAINHAS-FERNANDES, A. et al. Gill histopathological alterations in Nile tilápia, Oreochromis niloticus, exposed to treated sewage water. Braz. Arch. Biol. Techn., v. 51, p. 1057-63, 2008. GILMOUR, K.M. Gas exchange. In: Evans, D.H (Ed).The physiology of fishes. CRC Press LLC. p. 101-127, 1998. 98 GRAVATO, C.; SANTOS, M.A. Liver phase I and phase II enzymatic induction and genotoxic responses of -naphthoflavone water-exposed sea bass. Ecotox. Environ. Safe., n. 52, p. 62-8, 2002. GRISOLIA, C. K.; CORDEIRO, C. M. T. Variability in micronucleus induction with different mutagens applied to several species of fish. Genet. Mol. Biol., v. 23, n. 1, p. 235-39, 2000. HAVELKOVA, M. et al. Biomarkers of Contaminant Exposure in Chub (Leuciscus cephalus L.) – Biomonitoring of Major Rivers in the Czech Republic. Sensor, n. 7, p. 2599-611, 2008. HEATH, A. G. Water pollution and fish physiology. 2.ed. CRC Press, Lewis publishers, 1995. HEDDLE, J.A. et al. Micronuclei as an index of cytogenetic damage: Past, present, and future. Environ. Mol. Mutagen., v. 18, p. 277-91, 1991. HINTON, D. E. et al. Liver Toxicity. In: DI GIULIO, R. T.; HINTON, D. E. (Eds.). The Toxicol. of Fishes. 2008. HOCHACHKA, P.W. SOMERO, G. N. Biochemical adaptations. Princeton University Press, Princeton. p. 537, 1984. HOOK, S.; LEE, R. F. Genotoxicant induced DNA damage and repair in early and late developmental stages of the grass shrimp Paleomonetes pugio embryo as measured by the comet assay. Aquat. Toxicol., v. 66, p. 1-14, 2004. IBAMA- Instituto Brasileiro do Meio Ambiente e dos Recursos Naturais Renováveis - (22/04/2011 - Parintins/AM). Disponível em <http://www.ibama.gov.br/acidentes-ambientaisabril- 2011/empresa-e-multada-por-poluicao-e-morte-no-lago-do-macurany-parintins/am.pdf> Acesso em: 28 Jan. 2012. ISAAC, V. J.; RUFFINO, M. L. Biologia pesqueira do tambaqui, Colossoma macropomum, no Baixo Amazonas. In: Recursos Pesqueiros do médio Amazonas: biologia e 99 estatística pesqueira. Brasília: Edições IBAMA, Coleção Meio Ambiente, Série Estudos Pesca, 2000. JAGER, T.et al. Novel view on predicting acute toxicity: Decomposing toxicity data in species vulnerability and chemical potency. Ecotox. Environ. Safe., n. 67, p. 311-22, 2007. JIRAUNGKOORSKUL, W. et al. Biochemical and Histopathological Effects of Glyphosate Herbicide on Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Environ. Toxicol., n. 18. p. 260-67, 2003. JONSSON, C.M; CASTRO, V.L. Bioindicadores e biomarcadores de agroquímicos no contexto da relação saúde ambiente. EMBRAPA, 2005. Disponível em <http://www.agencia.cnptia.embrapa.br/recursos/Jonsson_Castro_biomarcadoresID - U4Vhi5C93K.pdf.> Acesso em 15 Mar. 2012. KAMPEN, E.J.; ZIJLSTRA, W.G. Standartization of hemoglobinometry. In: Boroviczény C.G. (Ed). Erythrocytometric methods and their standartization. Bibl. Haematol., p. 68-72, 1964. KARAN, V. et al. Functional enzymes activity and gill histology of carp after copper sulfate exposure and recovery. Ecotox. Environ. Safe., n. 40, p. 49-55, 1998. KJELDSEN, P., CHRISTOPHERSEN, M. Composition of leachate from old landfills in Denmark. Waste Manage. v. 19, p. 249–56, 2001. KLOBUCAR, G.I.V.; PAVLICA, M; REVÉN, R.; PAPES, D. application of the micronucleus and comet assays to mussel Dreissena polymorpha haemocytes for genotoxicity monitories of freshwater environments. Aquat. Toxicol., v. 64, p. 15-23, 2003. LEMOS, C. T. et al. Biomonitoring of genotoxicity using micronuclei assay in native population of Astyanax jacuhiensis (Characiformes: Characidae) at sites under petrochemical influence. Sci. total environ., v. 406, n. 1-2, p 337-43, nov 2008. LEMOS, C.T. et al. River water genotoxicity evaluation using micronucleus assay in fish erythrocytes. Ecotox. Environ Safe., n. 66, p. 391–401, 2007. 100 LICHTENFELS, A.J.F.C. et al. Effects of water pollution on the gill apparatus of fish. J. Comp. Path., v. 115, p. 47-60, 1996. LIMA, E.F. Acumulação de hidrocarbonetos policíclicos aromáticos e metais traço em invertebrados marinhos e avaliação do uso de biomarcadores celulares e bioquímicos no biomonitoramento. 2001. Tese (Doutorado em Química). Pontifícia Universidade Católica do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, 2001. LINDE, A.R.et al. Brown trout as biomonitor of heavy metals pollution: effect of age on the reliability of the assessment. Ecotox. Environ. Safe., n. 40, p. 120-25, 1998. LIVINGSTONE, D. R. The fate of organic xenobiotics in aquatic ecosystems: quantitative and qualitative differences in biotransformation by invertebrates and fish. Comp. Biochem. Phys., v. 120, p. 43-9, 1998. LUEBKE, R.W.; HODSON, P.V.; FAISAL, M.; ROSS, P.S.; Grasman, K.A; ZELIKOFF, A. Aquatic pollution-induced immunotoxicity in wildlife species. Fund. Appl Toxicol., v. 37, p. 1-15, 1997. MACO-GARCIA, J. T. Influência da água de formação da extração de petróleo do Rio Urucu sobre aspectos hematológicos e conteúdo iônico de Colossoma macropomum e Glyptoperichthys joselimaianus. 1997. Dissertação (Mestrado em Biologia-Ecologia). Instituto Nacional de Pesquisa da Amazônia/Universidade do Amazonas, Manaus, Amazonas, 1997. MAGALHÃES, D.; FERRAO FILHO, A.. A ecotoxicologia como ferramenta no biomonitoramento de ecossistemas aquáticos. Oecologia Australis, América do Norte, 2000. Disponível em: http://www.oecologiaaustralis.org/ojs/index.php/oa/article/view/112/38. Acesso em: 25 Jan. 2012. MALUF, S.W.; ERDTMANN. Biomonitorização do dano genético em humanos. In: SILVA, J.; ERDTMANN, B.; HENRIQUES, J.A.P (Eds). Genética toxicológica. Porto Alegre: Alcance, 2003. 101 MARIA, V. L.; CORREIA, A. C.; SANTOS, M. A. Anguilla anguilla L. liver EROD induction and genotoxic responses after retene exposure. Ecotoxicol. Environ. Saf., n. 61, p. 230-38, 2005. MARIA, V. L.; CORREIA, A. C.; SANTOS, M. A. Anguilla anguilla L. Biochemical and genotoxic responses to benzo[a]pyrene. Ecotox. Environ. Safe., n. 53, p. 86-92, 2002. MARTIN Jr.; BLACK, M.C. Biomarker Assessment of the Effects of Petroleum Refinery Contamination on Channel Catfish. Ecotox. Environ. Safe., n. 33, p. 81-7, 1996. MARTINEZ, C. B. R. et al. Morphological and physiological acute effects of lead in the neotropical fish Prochilodus lineatus. Braz. J. Biol., v. 64, n. 4, p. 797-807, 2004. MARTY, G. D. et al. Retrospective analysis: bile hydrocarbons and histopathology of demersal rockfish in Prince William Sound, Alaska, after the Exxon Valdez oil spill. Mar. Environ. Res., v. 56, p. 559-84. 2003. MATSUO, A.Y.O.; VAL, A. L. Aluminium effects in C. M exposed to softwater, calcium, and humic substances at low pH: implications for local aquaculture. Annual Meeting of the World Aquaculture Society, Salvador, BA, 2003. MATSUO, A.Y.O; OLIVEIRA, N.G.F; VAL, A.L. Efeito do cálcio e de substâncias húmicas na biodisponibilidade de zinco em tambaqui: balanço iônico, hematologia e alterações enzimáticas. 7 Reunião Especial da SBPC. Manaus, 2001. MAZON, A. F. Efeitos do íon cobre sobre o curimbatá, Prochilodus Scrofa (Steidachner, 1881). 1997. Dissertação de Mestrado, Universidade Federal de São Carlos. São Paulo, 1997. MAZON, A.F.et al. Hematological and physiological changes induced by short-term exposure to copper in freshwater fish, Prochilodus scrofa. Braz. J. Biol., v. 63, p 621-31, 2002. MCDONALD, D.G.; WOOD, C.M. Branchial mecanisms of acclimation to metals in freshwater fish. In: Fish Ecophysiology. Rankin & Jensen (Eds). Chapman & Hall. London. p. 297-321, 1993. 102 MEADOR, J.P. et al. Bioaccumulation of polycyclic aromatic hydrocarbons by marine organisms. Environ. Contam. Toxicol., v. 143, p. 79-/165, 1995. MEDDA, C. et al. Effect of rotenone on activity of some enzymes and their recovery in freshwater carp fingerlings of Labeo-Rohita. J. Environ. Biol., v.16, p. 55-60, 1995. MEIRE, R. O.; AZEREDO, A.; PAULO, J.; TORRES, M. Aspectos ecotoxicológicos de hidrocarbonetos policíclicos aromáticos. Oecol. Bras., v. 11, n. 2, p. 188-201, 2007. MENEZES, A.C.L. Toxicidade do cobre no tambaqui Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) em pH 4 e pH 8. 2005. Dissertação (Mestrado em Ciências Biológicas), Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia, Manaus, 2005. MENEZES, A.C.L. Toxicidade do cobre no tambaqui Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) em pH 4 e pH 8. 2005. Dissertação (Mestrado em Ciências Biológicas), Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia, Manaus, 2005. MIRANDE, J. M. Phylogeny of the family Characidae (Teleostei: Characiformes): from characters to taxonomy. Neotrop. Ichthyol., n. 8, p. 385- 568, 2010. MITCHELMORE, C.L.; CHIPMAN, J.K. DNA strand breakage in aquatic organisms and the potential value of the comet assay in environmental monitoring. Mutat. Res., v. 399, p. 135- 47, 1998. MOURA, M.A.F.; OLIVEIRA, M.I.S.; VAL, A.L. Effects of hypoxia on leukocyts of two amazon fish Colossoma macropomum and Hoplosternum littorale. Cienc. Biol., v. 2, p. 13- 22, 1997. NEWMAN, M.C.; UNGER, M.A. Fundamentals of Ecotoxicology. 2. ed., Lewis Publishers, EUA, 2003. NUNES, D. C. L.; FONSECA, A. L. Avaliação da eficiência da ETE (Estação de Tratamento de Efluente) da indústria Mahlet/Itajubá utilizando bioensaios de 103 toxicidade aguda com microcrustáceos. In: VII Congresso Brasileiro de Ecotoxicologia, 2002, Vitória. Livro de Resumos VII Ecotox. Vitória. 2002. NUSSEY, G., VAN VUREN, J.H.J., DU PREEZ, H.H. Effect of copper on the haematology and osmoregulation of Mozambique tilapia, Oreochromis mossambicus (Cichlidae). Comp. Biochem. Phys., v. 111, p 359-67, 1995. OIKARI, A.; JIMENEZ, B. Effects of hepatotoxicants on the induction of microsomal monooxygenase activity in sunfish liver by b-naphtoflavone and benzo[a]pyrene. Ecotox. Environ. Safe., n. 23: p. 89-102, 1992. OLIVEIRA, C. A. R. et al. Bioaccumulation and the effects of organochlorine pesticides, PAH and heavy metals in the Eel (Anguilla anguilla) at the Camargue Nature Reserve, France. Aquat. Toxicol., v. 74, n. 1, p. 53-69. 2005. OLIVEIRA, C. P. F.; CHAGAS, E. C.; VAL, A. L. Efeito do cobre sobre o tomoatá, Haplosternum littorale (Hancack, 1828): respostas enzimáticas e níveis de estresse durante a exposição a concentração subletal. 7a Reunião Especial da SBPC. Manaus, 2001. OLIVEIRA, C.P.F., Biomarcadores moleculares, genotóxicos e enzimáticos de efeitos do petróleo em tambaqui (Colossoma macropomum): subsídios para monitoramento ambiental na Amazônia. 2010. Tese (Doutorado em Biotecnologia), Universidade Federal do Amazonas. Manaus, 2010. OLIVEIRA, C.P.F., Efeito do cobre e chumbo, metais pesados presentes na água de formação derivada da extração do petróleo da província petroleira do Urucu – AM, sobre o tambaqui, Colossoma macropomum (Cuvier, 1818). 2003. Dissertação de mestrado (Biologia Tropical e Recursos Naturais). Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia/Universidade Federal do Amazonas (INPA/UFAM), Manaus, Amazonas, 2003. PACHECO, M., SANTOS, M. A. Biotransformation, genotoxic, and histopathological effects of environmental contaminants in European eel (Anguilla anguilla L.). Ecotox. Environ. Safe., v.53, n. 3, p. 331-47. 2002. 104 PACHECO, M.; SANTOS, M. A. Biotransformation, endocrine, and genetic responses of Anguilla anguilla L. to petroleum distillate products and environmentally contaminated waters. Ecotox. .Environ. Safe., v. 49, p. 64–75, 2001a. PACHECO, M.; SANTOS, M. A. Induction of EROD activity and genotoxic effects by polycyclic aromatic hydrocarbons and resin acids on juvenile eel (Anguilla anguilla). Ecotox. Environ. Safe., n. 38, p. 252-59, 1997. PACHECO, M.; SANTOS, M. A. Induction of liver EROD and erythrocytic nuclear abnormalities by cyclophosphamide and PAHs in Anguilla anguilla L. Ecotox. Environ. Safe., v.40, p. 71-6, 1998. PACHECO, M.; SANTOS, M. A. Tissue distribution and temperaturedependence of Anguilla anguilla L. EROD activity following exposure to model inducers and relationship with plasma cortisol, lactate and glucose levels. Environ. Int., v. 26, p. 149-55, 2001b. PACHECO, M.; SANTOS. M.A. Biotransformation, genotoxic, and histopathological effects of environmental contaminants in European eel (Anguilla anguilla L.). Ecotox. Environ. Safe., n. 53, p. 331–47, 2002. PANDEY, S. et al. Effect of endosulfan on antioxidants of freshwater fish Channa punctatus Bloch:1. Protection against lipid peroxidation in liver by copper preexposure. Archives of Environ. Contamin. Toxicol., n. 41, p. 345–52, 2001. PANDRANGI, R. et al. Alkaline single cell (comet): assay and genotoxicity monitoring using bullhead and carp. Environ. Mol. Mutagen., v. 26, p. 345-56, 1995. PARVEZ, S., SAYEED, I., RAISUDDIN, S. Decreased gill ATPase activities in the freshwater fish Channa punctata (Bloch) exposed to a diluted paper mill effluent. Ecotox. Environ. Safe., v. 65, p. 62–6, 2006. PEREZ, J.E; GONZALES, D. Influência del ambiente sobre diversos parâmetros sanguíneos en pices. In: Resumos do V simpósio latino Americano sobre Oceanografia Biológica. Universidade de São Paulo, São Paulo. p. 191-92, 1978. 105 PESSOA, L. O. A.; AZEVEDO FILHO, J. D. M. O problema do lixo em Parintins (Am) e a inserção da associação dos catadores na coleta seletiva. 61 Reunião Anual da SBPC. Manaus, 2009. PHILIPS, P.S.; FREESTONE, N.P.; HALL, R.S. Dealing with leachate. Chem. Brit., v. 30, p. 828-30, 1994. POMPEU, P. S.; ALVES, C. B. M.; CALLISTO, M. The effects of urbanization on biodiversity and water quality in the Rio das Velhas basin, Brazil. In: Brown, GRAY, L. R. et al. (Ed.). Effects of urbanization on stream ecosystems. American Fisheries Society, Symposium., v. 47, p. 11-22, 2005. QUINTANEIRO, C. et al. Environmental pollution on natural populations: A biomarkers case study from the Iberain Atlantic Coast. Mar. Pollut. Bull., v. 52, p. 1406-413. 2006. RANDALL, D.; BURGGREN, W.; FRENCH, K. Fisiologia Animal: mecanismos e adaptação. 4ª ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2000. RAO, J. V. Sublethal effects of an organophosphorus insecticide (RPR-II) on biochemical parameters of tilapia, Oreochromis mossambicus. Comp. Biochem. Phys., v. 143, p. 492-98, 2006. RAW, I. Bioquímica: fundamentos para as ciências biomédicas. In: RAW, I.; FREEDMAN, A. & MENNUCCI, L. (Eds.). São Paulo: McGraW-Hill do Brasil, 1981. RENOU, S. et al. Landfill leachate treatment: Review and opportunity. J. hazard. Mater., v. 150, n. 3, p. 468-93, 2008. RISSO-DE FAVERNEY, C. et al. Cadmium induces apoptosis and genotoxicity in rainbow trout hepatocytes through generation of reactive oxygen species. Aquat. Toxicol., v.53, p. 65- 76, 2001. 106 ROCHE, H.; BOGE, G. Fish blood parameters as a potential tool for identification of stress caused by environmental factors and chemical intoxication. Mar. Environ. Res., v. 41, p. 27- 43, 1996. ROGERS, J.T., RICHARDS, J.G., WORD, C.M. Ionoregulatory disruption as the acute toxic mechanism for lead in the raibow trout (Oncornhynchus mykiss). Aquat. Toxicol., v. 64, p. 215-34, 2003. RUSSO, C. et al. Assessment of environmental stress by the micronucleus test and the Comet assay on the genome of teleost populations from two natural enviranments. Ecotox. Environ. Safe., n 57. p. 168-74, 2004. SANCHES-GALLAN, S. et al. Inductionof micronuclei in eel (Anguilla anguilla L.) by heavy metals. Ecotox. Environ. Safe., v. 49, p. 139-43, 2001. SANCHES-GALLAN, S. et al. Micronuclei and fluctuating asymmetry in brown trout (Salmo trutta): complementary methods to biomonitor freswater ecosystems. Mut. Res., v. 412, p. 219-25, 1998. SANCHES-GALLAN, S.; LINDE, A. R.; GARCIA-VAZQUEZ, E. Brown trout and european minnow as target species for genotoxicity tests: differential sensitivity to heavy metals. Ecotox. Environ. Safe., v. 43, p. 301-04, 1999. SANTOS, M.A.; PACHECO, M. Anguilla anguilla L. stress biomarkers recovery in clean water and secondary-treated pulp mill effluent. Ecotox. Environ. Safe., v. 35, p. 96–100, 1996. SCHIMIDT-NIELSEN, K. Fisiologia animal: adaptação e meio ambiente. 5 ed., São Paulo: Santos, 2002. SCHLENK, D., HANDY, R., STEINERT, S., DEPLEDGE, H., BENSON, W. Biotransformation in fishes. In: DI GIULIO, R. T., HINTON, D.E. (Eds.). The Toxicology of Fishes, CRC Press, Boca Raton, FL. p.153-234, 2008a. 107 SCHLENK, D., HANDY, R., STEINERT, S., DEPLEDGE, H., BENSON, W. Biomarkers.In: DI GIULIO, R. T., HINTON, D.E. (Eds.). The Toxicol. of Fishes, CRC Press,Boca Raton, FL. p.683-732, 2008b. SCHMALZ JR., W.F., HERNANDEZ, A.D., WEIS, P. Hepatic histopathology in two populations of the mummichog, Fundulus heteroclitus. Mar. Environ. Res., v. 54, n. 3, p 539–42, 2002. SCHULZ, U.H.; MARTINS-JUNIOR, H. Astyanax fasciatus as bioindicator of water pollution of Rio dos Sinos, RS, Brasil. Braz., J. Biol., v. 61, p. 1-8, 2001. SHUGART LR. DNA damage as a biomarker of exposure. Ecotoxicology. n. 9, p. 329-40, 2000. SILVA, J.; HEUSER, V.; ANDRADE, V. Biomonitoramento ambiental. In: SILVA, J.; ERDTMANN, B.; HENRIQUES, J.A.P (Eds). Genética toxicológica. Porto Alegre: Alcance, 2003. SILVA, A. G.; MARTINEZ, C.B.R. Morphological changes in the kidney of a fish living in an urban strem. Environ. Toxicol. Pharmacol., v. 23, p. 185-92, 2007. SIMONATO, J.D. Biomarcadores funcionais e histopatológicos á exposição do peixe Prochilodus lineatus ao óleo diesel. 2006. Dissertação de mestrado (Ciências Biológicas). Universidade Estadual de Londrina, Londrina, 2006. SIMPSON, M. G. et al. Pathology of the liver, kidney and gonad of flounder (Platichtys flesus) from a UK estuary impacted by endocrine disrupting chemicals. Mar. Environ. Res., v. 50, p. 283-87. 2000. SINSINNO, C. L. S. Destino dos resíduos sólidos urbanos e industriais no estado do rio de Janeiro: avaliação da toxicidade dos resíduos e suas implicações para o ambiente e para a saúde humana. 2002. Tese (Doutorado em Ciências), Fundação Oswaldo Cruz, 2002. 108 SISINNO, C.L.S. Resíduos Sólidos e Saúde Pública. In: SISINNO, C. L. S.; OLIVEIRA, R. M. (org). Resíduos Sólidos, Ambiente e Saúde: Uma Visão Multidisciplinar. Rio de Janeiro: Editora Fiocruz, 2000. SMITH, W. H. Principles of Biochemistry. International Student Edition, p. 874, 1959. SOFIA, S. H. et al. Population genetic structure of Astyanax scabripinnis (Teleostei, Characidae) from an urban stream. Hydrobiol., v. 553, p. 245-254, 2006. STEHR, C. M. et al. Toxicopathic liver lesions in English sole and chemical contaminant exposure in Vancouver Harbour, Canada. Mar. Environ. Res., v. 57, p. 55-74. 2003. STEINERT, S. A. Contribution of apoptosis to observed DNA damage in mussel cells. Mar. Environ. Res., v. 42, p. 253-59, 1996. STEINERT, S. A. et al. DNA damage in mussels at sites in San Diego Bay. Mutat. Res., v. 399, p. 65–85, 1998. STENTIFORD, G. D. et al. Histopathological biomarkers in estuarine fish species for the assessment of biological effects of contaminants. Mar. Environ. Res., v. 55, n. 2, p 137-59. 2003. TAO, S. et al. Fish uptake of inorganic and mucus complexes of lead. Ecotox., Environ. Safe., n. 46, p. 174-180, 2000a. TAO, S. et al. The influence of mucus on copper speciation in the gill microenvironment of carp (Cyprinus carpio). Ecotox., Environ. Safe., n. 47, p. 59-64, 2000b. TELES, M.; PACHECO, M.; SANTOS, M. A. Anguilla anguilla L. liver ethoxyresorufin Odethylation, glutathione S-transferase, erythrocytic nuclear abnormalities, and endocrine responses to naphthalene and naphthoflavone. Ecotox., Environ. Safe., v. 55, p. 98-107, 2003. 109 TORTELLI, V. et al. Importance of cholinesterase kinetic parameters in environmental monitoring using estuarine fish. Chemosphere. v. 65, p. 560-66, 2006. VAL, A. L.; Oxigen-transfer in fish morphological and molecular adjustments. Braz. J. Med. Biol. Res., p. 1119-27, 1995. VAL, A.L.; ALMEIDA-VAL, V.M.F. Effects of crude oil on respiratory aspects of some fish species of the Amazon. In: VAL, A.L.; ALMEIDA-VAL, V.M. (Eds). Biol trop. fishes. Manaus- Amazonas: Instituto Nacional de Pesquisa da Amazônia, 1999. VAL, A.L.; ALMEIDA-VAL, V.M.F. Fishes of the Amazon and their environments. Physiol. biochem features. Heidelberg, Springer Verlag, 1995. VALENTI, W. C. et al. Aquicultura no Brasil. Bases para um desenvolvimento sustentável. Brasília: CNPQ- Ministério da Ciência e Tecnologia, 2000. VAN DER OOST, R.; BEYER, J.; VERMEULEN, N.P.E. Fish bioaccumulation and biomarkers in environmental risk assessment: a review. Environ. Toxicol. Pharmacol., v. 13, p. 149-57, 2003. VANZELLA, T. P.; MARTINEZ, C. B. R.; CÓLUS, I. M. S. Genotoxic and mutagenic effects of diesel oil water soluble fraction on a neotropical fish species. Mutat. Res., v. 63, p. 36–43, 2007. VERNIER, P.; CANOVA, S. Formation of DNA adducts in the gill tissues of Mytilus galloprovincialis treated with benzo[a]purene. Aquat. Toxicol., v. 34. p. 119-33, 1996. VIARENGO, A. et al. The use of biomarkers in biomonitoring: A 2-tier approach assessing the level of pollutant-induced stress syndrome in sentinel organisms. Comp. Biochem. Phys.., v. 166, p. 281-300, 2007. WENDELAAR BONGA, S.E The stress response in fish. Phys. Rev. v. 77, p 591–625, 1997. 110 WILHELM FILHO, D. et al. Seasonal changes in antioxidant defenses of the digestive gland of the Brown mussel (Perna perna). Aquaculture., v. 203, p 149-58, 2001. WILSON, R; E. TAYLOR. The physiological responses of freshwater rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss) during acutely lethal copper exposure. J. Comp. Physiol. B, v. 163, p. 38-45, 1993a. WILSON, R.; TAYLOR, E. Differential responses to copper in rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss) acclimated to sea water and brackish ater. J. Comp. Physiol. B, v. 163, p. 239-246, 1993b. WINKALER, E.U. et al. Biomarcadores histológicos e fisiológicas para o monitoramento da saúde de peixes de ribeirões de Londrina, Estado do Paraná. Acta Sci., v. 23, n. 2, p. 507-14, 2001. WIRGIN, I.; WALDMAN, J.R. Altered gene expression and genetic damage in North American fish populations. Mutat. Res., v.399, p. 193-219, 1998. WOOD, C.M. et al. Responses of an Amazonian teleost, the tambaqui (Colossoma macropomum) to low pH in extremely soft water. Physiol. Zool., n. 71, p. 658-70, 1998. ZAGATTO, P.A. Ecotoxicologia. In: ZAGATTO, P.A.; BERTOLETTI, E. (Eds.). Ecotoxicologia Aquática – Princípios e Aplicações. 2 ed. .São Carlos: RIMA, 2008. ZAR, J. K.. Biostatistical analysis. 2ed. New Jersey : Pretice-Hall, 1984. ZIKIC, R.V. et al. Activities of superoxide dismutase and catalase in erythrocyte and plasma transaminases of goldfish (Carassius auratus gibelio Bloch) exposed to cadmium. Physiol. Res., v. 50, p.105-111, 2001.pt_BR
dc.subject.cnpqBiotecnologiapt_BR
dc.publisher.initialsUEApt_BR
Appears in Collections:DISSERTAÇÃO - MBT Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia e Recursos Naturais da Amazônia



This item is licensed under a Creative Commons License Creative Commons