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dc.contributor.authorSilva, Daniel da-
dc.date.available2020-03-02-
dc.date.available2020-03-19T01:28:04Z-
dc.date.issued2015-04-12-
dc.identifier.urihttp://repositorioinstitucional.uea.edu.br//handle/riuea/2397-
dc.description.abstractThis project aimed to develop a micropropagation protocol of "Jucá" (Caesalpinia ferrea Mart), an Amazon native species with medicinal, ornamental and timber potential. Seeds were obtained from the Seed Bank belonged to the Laboratoty of Microbiology and Soil Fertility at INPA-Manaus, and after processing, were submerged for 30 minutes in sodium hypochlorite solution of 0.0%, 0.10%, 0.25%, 0.50% and 1.0% and inoculated in MS basal medium. The treatment at 0.25% of sterilizing agent allowed 90% of germination of in vitro seeds. The explants germinated in vitro were targeted and inoculated on MS medium supplemented with 0.1 mg /L of BAP and 0.1 mg /L of IBA. The results indicate that 100% of explants showed shoots and 32.21% developed root systems and total absence of callus. It was observed that 90% of explants derived from yolks developed shoots with 2,73cm and higher proliferation rate (10.21%). The Acclimatization of explants of C. ferrea was possible without the presence of roots grown in vitro, and that the soil is the most suitable substrate for acclimatization with 63.33% of living plants. We conclude that this species can be propagated in vitro, however, further studies are necessary about acclimatization of plants multiplied in vitro in the greenhouse. Keywords: Biotechnology, Vegetal Tissue Culture, in vitro multiplication, Amazon medicinal plant.pt_BR
dc.languageporpt_BR
dc.publisherUniversidade do Estado do Amazonaspt_BR
dc.rightsAcesso Abertopt_BR
dc.rightsAtribuição-NãoComercial-SemDerivados 3.0 Brasil*
dc.rights.urihttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/br/*
dc.subjectBiotecnologiapt_BR
dc.subjectCultura de Tecidos Vegetaispt_BR
dc.subjectMultiplicação in vitropt_BR
dc.subjectPlanta Medicinal Amazônicapt_BR
dc.titleMicropropagação de Caesalpinia ferrea Martiuspt_BR
dc.typeDissertaçãopt_BR
dc.date.accessioned2020-03-19T01:28:04Z-
dc.contributor.advisor1Sampaio , Paulo de Tarso Barbosa-
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/0517307169401972pt_BR
dc.contributor.referee1Rezende , Cleiton Fantin-
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/3982396993273580pt_BR
dc.contributor.referee2Albuquerque , Patricia Melchionna-
dc.contributor.referee2Latteshttp://lattes.cnpq.br/1177407730126204pt_BR
dc.contributor.referee3Rapôso, Nádia Verçosa de Medeiros-
dc.contributor.referee3Latteshttp://lattes.cnpq.br/5791520737203814pt_BR
dc.description.resumoEste trabaho teve como objetivo desenvolver um protocolo de micropropagação do Jucá (Caesalpinia ferrea Mart) espécie nativa da Amazônia com potencial medicinal, ornamental e madeireiro. As sementes foram obtidas do Banco de Sementes do Laboratório de Microbiologia e Fertilidade do Solo do INPA e após o beneficiamento, foram submersas por 30 minutos em solução de hipoclorito de sódio nas concentracões de 0,0%, 0,10%, 0,25 %, 0,50% e 1,0% e inoculadas em meio de cultura de MS basal. O tratamento com 0,25% do agente desinfestante possibilitou 90% de germinação in vitro de sementes. Os explantes germinados in vitro foram segmentados e inoculados no meio de cultura MS suplementado com 0,1 mg/L de BAP e 0,1 mg/L de IBA. Os resultados indicam que 100% de explantes apresentaram brotações e 32,21% desenvolveram sistemas radiculares e ausência total de calos. Foi observado que 90% dos explantes originados das gemas desenvolveram brotos com 2,73 cm de altura e maior taxa de multiplicação (10,21%). A aclimatação de explantes de C. ferrea foi possível sem a presença de raízes desenvolvidas in vitro e, que o substrato terra é o mais indicado para a aclimatação, apresentando 63,33% de plantas vivas. Concluimos que esta espécie pode ser propagada in vitro, entretanto, é necessário aprofundar os estudos sobre a aclimatação das plantas multiplicadas in vitro na casa de vegetação. Palavras-chave: Biotecnologia, Cultura de Tecidos Vegetais, Multiplicação in vitro, Planta Medicinal Amazônica.pt_BR
dc.publisher.countryBrasilpt_BR
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Biotecnologia e Recursos Naturais da Amazôniapt_BR
dc.relation.referencesABREU, I.N.; PINTO, J.E.B.P.; BERTOLUCCI, S.K.V.; MORAIS, A.R.; GEROMEL, C.; LADEIRA, A.; LAMEIRA, O. A. Propagação in vivo e in vitro de Cissus sicyoides, uma planta medicinal. Acta Amazônica, v.33, n.1 p. 1-7. 2003. ASGHARI, S.; ABBAS, S.J.; GHEN, L.; XINHUA, H.; QIN, Y. Micropropagation of Myrcia rubra Sieb. and Zucc. using shoot tips and nodal explant. African Journal of Agricultural Research, v.8, n.17, p. 1731-1737. 2013. ALZUGARAY, D. Plantas que Curam. Sao Paulo: Hemus Press, 1984. ASMAR, S.A.; RESENDE, R.F.; ARARUNA, E.C.; MORAIS, T.P.; LUZ, J.M.Q.. Concentrações de BAP sobre a proliferação in vitro de brotos de Lippia alba [(Mill.)N.E.Brown]. Revista Brasileira de Plantas Medicinais. Botucatu, v.14, n.esp., p.149-153, 2012. ASSIS, T.F.; TEIXEIRA, S.L. Enraizamento de plantas lenhosas. In: TORRES, A.C.; CALDAS, L. S.; BUSO, J. A. (Orgs.). Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Brasília, DF: Embrapa, p. 261-296, 1998. AYUB; R.A.; GEBIELUCA, A.N. Embriogênese somática em genótipos de café (Coffea arabica) é citocinina dependente. Ciências Agrárias Engenharia, Ponta Grossa, v.9, n.2, p.25-30, 2003. BALBACH, A. As plantas que curam. Sao Paulo: Tres, p. 302-303, 1988. BARROSO, G.M.; PEIXOTO, A.L.; COSTA, C.G.; ICHASSO, C.L.F.; GUIMARÃES, E.F. & LIMA, H.C. Sistemática das Angiospermas do Brasil. v.2. Viçosa: Imprensa Universitária, 1991. BENEDITO, C.P.; COELHO, M.F.B.; GUIMARÃES, I.P.; AMARAL JUNIOR V.P.; MAIA, S.S.S.; PATISTA, P.F. Emergência e crescimento inicial de plântulas de Caesalpinia ferrea Mart. ex Tul. var. ferrea em diferentes substratos. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, v.7, n.3, p.508-513, 2012. BERTONI, B.W.; MORAES, R.M.; PREVIDELLI, L.L.; PEREIRA, P.S.; FRANÇA, S.C.F.; PEREIRA, A.M.S. In vitro propagation and conservation of Zeyhera montana Mart: and endangered medicinal plant. American Journal of Plant Sciences. v. 4, 519-523, 2013. BIONDO, R.; SOUZA, A.V.; BERTONI, B.W.; SOARES, A.M.; FRANÇA, S.C.; PEREIRA, A.M.S. Micropropagation, seed propagation and germoplasm bank of Mandevilla velutina (Mart.). Scientia Agricola, v.64, n.3, p.263-268, 2007. BRAGA, R. Plantas do Nordeste, especialmente do Ceará. Fortaleza: Departamento Nacional de Obras Contra as Secas, 540p, 1976. CALDAS, L. S.; HARIDASAN, P.; FERREIRA, M. E. Meios Nutritivos. In: TORRES, A.; CALDAS, L. S.; BUSO, J. A. (Orgs.). Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Brasília: Embrapa-SPI/Embrapa CNPH, v. 1, p. 87-132, 1998. 49 CARVALHO, A.C.P.P.; TORRES, A.C; BRAGA, E.J.B.; LEMOS, E.E.P.; SOUZA, F.V.D.; PETERS, J.A.; WILLADINO, L.; CÂMARA, T.R. Glossário de culturas de tecidos de plantas. Plant Cell Culture and Micropropagation, Lavras, v. 7, n.1, p. 30-60, 2011. CARVALHO, J.C.T.; TEIXEIRA, J.R.M.; SOUZA, P.J.C.; SOUZA, P.J.C.; BASTOS, J.K.; DOS SANTOS, D.; SARTI, S.J. Preliminary studies of analgesic and anti-inflammatory properties of Caesalpinia ferrea crude extract. Journal of Ethnopharmacology, v.53, p.175-178, 1996. CARVALHO, J.M.F.; SILVA, M.M.A.S; MEDEIROS, M.J.L. Fatores Inerentes à Micropropagação, Embrapa Algodão, Campina Grande-PB, 28p, 2006. CAVALHEIRO, M.G.; FARIAS D.F.; FERNANDES, G.S; NUNES, E.P.; CAVALCANTI, F.S.; VASCONCELOS, I.M.; MELO, V.M.M.; CARVALHO, A.F.U. Atividades biológicas e enzimáticas do extrato aquoso de sementes de Caesalpinia ferrea Mart. Leguminosae. Revista Brasileira de Farmacognosia, v.19, n.2b, p.586-591, 2009. CHAVES, A. da C.; SCHUCH, M.W; ERIG, A.C. Efeito do meio de cultura e concentrações de auxinas no enraizamento in vitro de Prunus cerasifera cv. MR. S. 1/8. Plant Cell Culture and Micropropagation, v. 2, n. 1, p. 43-47, 2006. COLL, J.B.; RODRIGO, G.N.; GARCIA, B.S.; TAMÉS, R.S. Fisiologia vegetal. Madrid: Ediciones Pirâmide, 662p, 2001. CORDEIRO, S.C.; SIMAS, N.K.; HENRIQUE, A.B.; LAGE; C.L.S.; SATO, A. Micropropagation of Mandevilla moricandiana (A.D.C.) Woodson. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant. v. 48:620-626, 2012. COWAN, R.S. Caesalpinioideae. In: R.M. Polhill & P.H. Raven (Eds.). Advances in Legume Systematics part.., p. 57-64, 1981. CRONQUIST, A. An integrated system of classification of flowering plants. New York: Columbia University Press, 1981. CUNHA, H.B. & PASCOALOTO, D. Hidroquímica dos rios da Amazônia. Centro Cultural dos Povos da Amazônia – CCPA. Manaus. 147p. 2006. DAS, S.; CHOUDHURY, M.D.; MAZUMDAR, P.B. Micropropagation of Dioscorea alata L. through nodal Segments. African Journal of Biotechnology, v. 12, n. 47, p. 6611-6617, 2013. DI STASI, L.C.; HIRUMA-LIMA, C.A. Plantas medicinais na Amazônia e na Mata Atlântica. 2ª ed. São Paulo: UNESP, 604p, 2002. DINIZ. J.D.N; ALMEIDA, J.L.; OLIVEIRA, A.B.; VIDAL, F.R. Multiplicação e enraizamento in vitro de Minirosa. Revista Ciência Agronômica, v.45, n. 1, p. 68-73, 2014. DIXON, R.A; GONZÁLES, R.A. Plant cell culture: a practical approach. New York, Oxford University Press, 230p. volume único. Bibliografia: p.1-25, 1994 50 DUCKE, A. As leguminosas de Pernambuco e Paraíba. Memória do Instituto Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, v.51, p.417-461, 1953. FICK, T. A. Estabelecimento in vitro e propagação de Cordia trichotoma (Vell.) Arrabida ex Steudel (louro-pardo). Dissertação (Mestrado em Engenharia Florestal) – Universidade Federal de Santa Maria, Santa Maria, 61p. 2007. GAMBORG, O.L.; MILLER, R.A.; OJIMA, K. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean roots cells. Experimental Cellular Research, v. 50, p. 151-158, 1968. GEORGE, E.F & SHERRINGTON, P.D. Plant propagation by tissue culture: handbook and directory of commercial laboratories. Eversley, Exegetics, 709p. 1984 GIRARDI, C.G.; PESCADOR, Aclimatação de gengibre (Zingiber officinale Roscoe) e a relação com carboidratos endógenos. Revista Brasileira de Plantas Medicinais. Botucatu, v.12, n.1, p.62-72, 2010. GONZALES, S.R.; LOZANO, J.G.; ROJAS, H.J. Propagación assexual de plantas: Conceptos básicos y experiências con espécies amazônicas. Pronatta: Colombia., 55p., 2004. GRATTAPAGLIA, D.; MACHADO, M.A. Micropropagação. In: TORRES, A.C.; CALDAS, L.S.; BUSO, J.A. (Orgs). Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Brasília: Embrapa- SPI/Embrapa-CNPH, v.1. p.183-260, 1998. GUERRA, M.P & NODAR I,R.O. Apostila de Biotecnologia: Material de Apoio - 8° Fase do Curso de Agronomia. Edição Dast Einmacher - CC A/UFSC, Florianópolis, p.40, 2006. HARTMANN, H.T.; KESTER, D.E.; DAVIES, JR, GENEVE, R.L. Plant propagation: principles and practicas. New York: Prentice Hall, 8.ed. 880p, 2004. JESUS, A.M.S; PASQUAL, M.; DUTRA, L.F; CHAGAS, E.A. Cultivo in vitro de embriões zigóticos de Jatropha. Revista Ceres, Viçosa, v. 50, n. 288, p. 183-189, 2003. JUNGHANS, T.G.; SOUZA, S.A. Aspectos práticos da micropropagação de plantas. 2 ed. rev. Brasilia, DF: EMBRAPA, 407p, 2013. KAJIKI, F.O.; SHEPHERD, S.L.K. Micropropagação da espécie nativa Baccharis tridentata Vahl. (Asteraceae). Revista Brasileira de Plantas Medicinais, Botucatu, v.8, n.2, p.42-47, 2006. LÉDO, A.S.; GOMES, K.K.P.; BARBOZA, S. B.S. C.; VIEIRA, G.S.S.; TUPINAMBÁ, E.A.; ARAGÃO, W.M. Cultivo in vitro de embriões zigóticos e aclimatação de plântulas de coqueiro-anão. Pesquisa Agropecuária Brasileira. Brasília, v.42, n.2, p.147-154, 2007. LEWIS, G.P. Legumes of Bahia. Kew: Royal Botanic Gardens. 1987. LEWIS, G.P.; SCHRIRE, B.D.; MACKINDER, B.A.; Lock, J.M. Legumes of the World. Kew, Royal Botanic Gardens, 592p, 2005. 51 LIMA, C.S.M.; BANDEIRA, J.M.; RUBIN, S.; RIBEIRO, M.V.; BENITEZ, L.; PETERS, J.A.; BRAGA, E.J.B. Influência de fitorreguladores no crescimento in vitro de partes aéreas de Mentha viridis. Revista Brasileira de Biociências, v.5, supl.2, p.669-671, 2007. LLOYD, G.; MCCOWN, B. Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. Combined Proceedings of the International Plant Propagators Society, Ashville, v.30, p. 412-427, 1980. LONGO, A.E.O. Micropropagação de alho e ginogênese in vitro de cebola. Dissertação (Mestrado em Genética, Melhoramaneto Vegetal e Biotecnologia) - Instituto Agronômico, 130p, 2009. LORENZI, H. Árvores brasileiras: manual de identificação e cultivo de plantas arbóreas nativas do Brasil. Nova Odessa: Plantarum, 1992. LORENZI, H.; MATOS, F.J.A. Plantas medicinais no Brasil: nativas e exóticas. Nova Odessa: Plantarum, 512p, 2002. MAIA, G.N. Caatinga: árvores e arbustos e suas utilidades. São Paulo: Leitura e Arte, 236p, 2004. MALOSSO, M.G. Micropropagação de Acmella orelacea (L.) R. K. Jansen e estabelecimento de meio de cultura para conservação desta espécie em banco de germoplasma in vitro. Tese (doutorado). Manaus, UFAM, 101p, 2007. MALOSSO, M.G.; BARBOSA, E.P.; NAGAO, E.O. Micropropagação de jambu [Acmella oleracea (L.) R.K. Jansen]. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, Botucatu, v.10, n.3, p.91-95, 2008. MALOSSO, M.G.; BERTONI, B.W.; COPPEDE, J.S.; FRANÇA, S.C.; PEREIRA, A.M.S. Micropropagation and in vitro conservation of Jacaranda decurrens Cham. Journal of Medicinal Plants Research, v.6, n.7, p. 1147-1154, 2012. MARTINS, L.M,; PEREIRA, A,M,S.; FRANÇA, S.D.F.; BERTONI, B.W Micropropagação e conservação de Macrosyphonia velame (St. Hil.) Muell. Arg. em banco de germoplasma in vitro. Ciência Rural, Santa Maria, v.41, n.3, p.454-458, 2011. MEYER, S.T.O. uso de cloro na desinfecção de águas, a formação de trihalometanos e os riscos potenciais à saúde pública. Caderno de Saúde Pública, Rio de Janeiro, v. 10, n. 1, p. 99-110. 1994. MORAES, R.M.; CALDAS L.S, SILVEIRA, C.E.S, SOUZA, A.V, BERTONI B.W.; PEREIRA, A.S. Micropropagação e Banco de Germoplasma in vitro para produção e conservação de plantas nativas do Cerrado. In: PEREIRA, A.M.S. (Org.). Recursos genéticos e conservação de plantas medicinais do Cerrado. Legis Summa, Ribeirão Preto, SP, Brazil, p. 185-211, 2007. MOREIRA, C.M; ANDRADE, H.B; MONFORT, L.E.F; PINTO, J.E.B.P; BERTOLUCCI, S.K.V; RIBEIRO, A.S. Indução de brotação in vitro em curauá: sistema de cultivo e 52 concentrações de BAP. Horticultura Brasileira. v. 29 : S58-S66, 2011 MOREIRA, C.M. Biotecnologia aplica ao curauá (Ananas comosus var. erectifolius): caracterização morfológica, micropropagação e embriogênese somática em segmento foliar. Dissertação (Mestrado). UFLA, 112p, 2011. MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, Kopenhagen, v.15, n. 3, p. 473-497, 1962. NACIMENTO, M.G.A. Morfogênese in vitro do híbrido de orquídea Brassavola flagellaris x Cattleya harrisoniana. Dissertação (Mestrado em Ciências Agrárias). Cruz das Almas, BA: Universidade Federal Recôncavo da Bahia. 42p, 2007. NASCIMENTO, P.K.V.; FRANCO, E.T.H.; FRASSETTO, E.G. Desinfestação e Germinação in vitro de Sementes de Parapiptadenia rigidaBentham (Brenam). Revista Brasileira de Biociências, Porto Alegre, v.5, supl. 2, p. 141-143, jul. 2007. NAVROSKI, M.C. Multiplicação in vitro de genótipos de Eucalyptus dunnii Maideni. Dissertação (Mestrado em Engenharia Florestal). Santa Maria, RS: Universidade Federal de Santa Maria. 101p, 2011. NOGUEIRA, R.C.; PAIVA, R.; CASTRO, A.H.; VIEIRA, C.V.; ABBADE, L.C.; ALVARENGA, A.L. Germinação in vitro de murici-pequeno (Byrsonima intermedia A. Juss.). Ciências Agrotécnicas. Lavras, v. 28, n. 5, p. 1053-1059, 2004. NOLETO, L.G.; SILVEIRA, C.E.S. Micropropagação de copaíba – propagação in vitro de Copaifera langsdorffii Desf. Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento, Brasília, DF, n. 33, p. 109-120, 2004. NOZAKI, A.H.; HAYASHI, K.I.; KIDO, M.; KAKUMOTO, K.; IKEDA, S.; MATSUURA, N.; TANI, H.; TAKAOKA,D.; IINUMAE, M.; YAKAO, Y. Pauferrol, a novel chalcone trimer with a cyclobutane ring from Caesalpinia ferrea mart exhibiting DNA topoisomerase II inhibition and apoptosis-inducing activity / Tetrahedron Letters. v. 48, p. 8290–8292, 2007. OLIVEIRA, A.F.; BATISTA, J.S.; PAIVA, E.S.; SILVA, A.E.; FARIAS, Y.J.M.D.; DAMASCENO, C.A.R.; BRITO, P.D.; QUEIROZ, S.A.C.; RODRIGUES, C.M.F.; FREITAS, C.I.A. Avaliação da Atividade cicatrizante fazer Jucá (Caesalpinia ferrea Mart. ex Tul. var. ferrea ) em Lesões cutâneas de caprinos. Revista Brasileira de Plantas Medicinais. Botucatu, v.12 n.3, 2010. OLIVEIRA, ECP. Estratégias para a conservação e uso dos recursos genéticos de plantas medicinais e aromáticas na Amazônia. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE OLERICULTURA, 51. Horticultura Brasileira 29. Viçosa: ABH.S5777-S5789, 2011. OLIVEIRA, T.G.; PINA, P.S.S.; BERTONI, B.W.; FRANÇA, S.C.; PEREIRA, A.M.S. Micropropagação de Croton antisyphiliticus Mart. Ciência Rural, v. 41, n.10, out, 2011. OHIRA, S.; TAKAYA, K.; MITSUI, T.; KIDO, M.; KAKUMOTO, K.; HAYASHI, K.; KUBOKI, A.; TANI, H.; IKEDA, S.; IINUMA, M.; AKAO, Y.; NOZAKI, H. New chalcone 53 dimers from Caesalpinia ferrea Mart act as potent inhibitors of DNA topoisomerase I. Tetrahedron Letters, v.54, 5052–5055I, 2013. PASQUAL M. Cultura de Tecidos. Lavras: UFLA/FAEPE, 2001. PEIXOTO, C.P. Curso de Fisiologia Vegetal. – Cruz das Almas, BA.177f.; il. 2010. PEREIRA, A.M.S. et al. Effect of phytoregulators and physiological characteristics of the explants on micropropagation of Maytenus ilicifolia. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v. 42, p.295-297, 1995. POLHILL, R.M. & RAVEN, P.H. Advances in Legume Systematics part I. Kew, Royal Botanic Gardens, 1981. QUEIROZ, M.L.S.; JUSTO, G.Z.; VALADARES, M.C.; SILVA, F.R.R.P. Evaluation. of Caesalpinia ferrea extract on bone marrow hematopoiesis in the murine models of listeriosis and Ehrlich ascites tumor. Immunopharmacology and Immunotoxicology, New York, v. 23, n. 3, p. 367-382, 2001. QUISEN, R.C; ANGELO, P.C. SILVA. Manual de Procedimentos do Laboratório de Cultura de Tecidos. Manaus, AM: EMBRAPA- Amazônia Ocidental, 44p, 2008. RADMANN, E.B.; BIANCHI, V.J.; SOUZA, T.M.; FACHINELLO, J.C. Influência da composição do meio de cultivo. Scientia Agraria, Curitiba, v.10, n.2, p.095-101, 2009. REZENDE, J. C.; CARVALHO, C.H.S.; SANTOS, A.C.R.; PASQUAL, M.; MENDES, A.N.G. Influência de auxina e citocinina no desenvolvimento de embriões. Plant Cellular Culture Micropropagation. Lavras, v.7, n.1, p. 1-8, 2011. RIBAS, L.L.F.; ZANETTE, F.; KULCHETSCKI, L.; GUERRA, M.P. Micropropagação de Aspidosperma polyneuron (peroba-rosa) a partir de segmentos nodais de mudas juvenis. Revista Árvore. Viçosa-MG, v. 29, n. 4, p.517-524, 2005. RIBEIRO, C.S.N.; SILVA, H.; SANTOS, J.W.; CARVALHO, J.M.F.C. Efeito do tidiazuron na micropropagação in vitro de dois genótipos de mamona via organogênese. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola. Ambiental, v.14, n.4, p.366–371, 2010. RIBEIRO, J.M.; BASTOS D.C.; MELO N.F.; OLIVEIRA E.A.G.; PINTO M.S.T. Produção de mudas micropropagadas de videira, mangueira e goiabeira. Petrolina: Embrapa Semiárido, 2010. RIBEIRO, J.M.; BASTOS, D.C Biorreatores: aspectos gerais e sua utilização para cultura de tecidos vegetais. Petrolina: Embrapa Semi-Árido, 26p, 2008. RIZZINI, C.T. Espécies novas da flora brasileira. Anais da Academia Brasileira de Ciências, Rio de Janeiro, v.40, n.2, p.231-235, 1968. ROCHA P,S,G.; SCHUCH, M. W.; BIANCHI, V.J.; MISTURA, C.C.; Influência da localização da gema no ramo sobre o estabelecimento in vitro de porta-enxertos de Prunus spp. Revista Brasileira de Agrociência, Pelotas, v. 11, n. 4, p. 497-499, out-dez, 2005. 54 ROCHA, H. S. Biófábricas: estrutura física e organização. In: JUNGHAS, T.G.; SOUZA, A. da S. (eds.). Aspectos práticos da micropropagação de plantas. Cruz das Almas, BA. Embrapa Mandioca e Fruticultura Tropical, p 121-152, 2009. ROCHA, H.S. Biofábricas: estrutura física e organização. In: JUNGHANS, T.G & SOUZA, A.S. (eds.) Aspectos Práticos da Micropropagação de Plantas. 2 ed.rev. e amp., Brasília, DF: Embrapa, p. 133-164, 2013. RODRÍGUEZ, J.A. Aplicações da cultura de tecidos no melhoramento de plantas. Sitientibus, Feira de Santa, v.4, n.7, p. 121-125, 1987. ROQUE, A.A.; ROCHA, R.M.; LOIOLA, M.I.B. Uso e diversidade de plantas medicinais da caatinga na comunidade rural de Laginhas, município de Caicó, Rio Grande do Norte, (nordeste do Brasil). Revista Brasileira de Plantas Medicinais, v.12, p.31-42, 2010. SAHA, S.; KADER, A.; SENGUPTA, C. GHOSH, P. In Vitro Propagation of Ocimum gratissimum L. (Lamiaceae) and Its Evaluation of Genetic Fidelity Using RAPD Marke. American Journal of Plant Sciences, v. 3, p. 64-74, 2012. SANTOS, A.V.; ANTUNES, A.C.; BIZO, H.R.; GIL, R.A.S.; SATO, A. Varronia curassavia essential oil. In Vitro Cell and Development and Biology-Plant. v. 49, p. 405-413, 2013. SANTOS, R.B.; PAIVA, R.; NOGUEIRA.; OLIVEIRA, L.M.; SILVA, D.P.C.; MARTINOTTO, C.; SOARES, F.P.; PAIVA, P.D.O. Micropropagação de pequizeiro (Caryocar brasiliense Camb). Revista Brasileira de Fruticultura, v.8, n.2, p. 293-296. 2006. SANTOS-SEREJO, J.A.; JUNGHANS, T.G.; SOARES, T.L.; SILVA, K.M. Meios nutritivos para micropropagação de plantas. In: SOUSA, A. S.; JUNGHANS, T. G. Introdução à micropropagação de plantas, Cruz das Almas: EMBRAPA Mandioca e Fruticultura Tropical, p.79-98, 2006. SHAH, S.N.; HUSAIN, A.M.; SHIRIN, F. Micropropagation of the Indian Birthwort Arsitolochia indica L. International Journal for Biotechnology and Molecular Biology Research. Vol. 4(6) pp. 86-92, 2013. SILVA, D; SILVA, M.E.T.; MANRIQUE, J.L.R.; MACIEL, F.O.; MALOSSO, M.G. Enciclopédia Biosfera, v. 10, n.19, 2014. SILVA, F.A.B.; PEREIRA, L. A. R.; SILVEIRA, C.E.S. Micropropagation of Alibertia edulis Rich. Brazilian Archives of Biology and Technology, Curitiba, v.51, n.6, p.1103- 1114, 2008. SILVA, F.A.S.E.; AZEVEND, C.A.V. P. Principal Componentes Analysis in the Software Assistat-Statistical Attendance. In: World Congress on Computer in Agriculture, 7, Reno-NV-USA: Americam Society of Agricultural and Biological Engineers, 2009. SILVA, M.L.; CHAGAS, E.A.; ARAÚJO, M.C.R.; BRITO, N.; SOUSA, L. Diferentes concentrações de hipoclorito sódio e tempos de imersão na desinfestação de sementes de 55 camu-camu cultivadas in vitro. In: XXI Congresso Brasileiro de Fruticultura, Livro de Resumos: p535-538. 2012. SILVA, P.P.; CONTIM, L.A.S. FREITAS, D.V.; ARIDE, P.H.R.;SANTOS, A.L.W. Estabelecimento in vitro de ápices... Scientia Agraria, Curitiba, v.11, n.6, p.437-443, 2010. SOUZA, L.A.G. Leguminosas para adubação verde na terra firme e na várzea da Amazônia Centra: um estudo em pequenas propriedades rurais em Manacapuru. –Manaus. Editora INPA, 40p, 2002. SOUZA, A.V.; PEREIRA M.A.S. Enraizamento de plantas cultivadas in vitro. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, Botucatu, v.9, n.4, p.103-117, 2007. SOUZA, A.S.; LEDO, C.A.S; SILVEIRA, D.G; SOUZA, F.V.D; FARIA, G.A; NETO, H.P. S; SANTOS SEREJO, J.S; SILVA, K.M; COSTA, M.A.P.C; SOARES, T.L; JUNGHANS, T. G.; ALMEIDA, W.B. Introdução à micropropagação de plantas. Cruz das Almas: EMBRAPA Mandioca e Fruticultura Tropical, p. 38-52, 2006. SOUZA, J.S.; SCHUCHII, A.W.; DONINII, L.P.; RIBEIRO, M.F. Tipos e concentrações de citocinina na multiplicação in vitro de pitangueira. Ciência Rural, Santa Maria, v.38, n.7, p.2046-2048, 2008. SSYED ASGHARI1, S.; ABBAS, S.J.; CHEN, L.; XINHUA, E.; YONGHUA, Q. SUDHAKAR, M. Antimicrobial activity of Caesalpinia pulcherrima, Euphorbia hirta and Asystasia gangeticum. Fitoterapia, Amsterdam, v.77, n. 5, p. 378-380, 2006. SUNGKUMLONG; DEB, C. R. Regeneration competence of Tainia latifolia (Lindl.) Benth ex Hook pseudobulb segments: An in vitro study. Indian Journal of biotechnology, New Delhi, v. 8, n. 1, p. 121-126, 2009. TAIZ, L.; ZEIGER, E. Fisiologia vegetal. Porto Alegre: Artmed, 819p, 2009. TAVEIRA, J.A.M. Novas Tecnologias na Aclimatização, Formação e Manejo de Mudas. In: GERALD, L.T.S. Biofábricas de plantas: produção industrial de plantas in vitro. 1ed. São Paulo: Antiqua, p.246-269, 2011. TERMIGNONI, R.R. Cultura de tecidos vegetais. Porto Alegre: Ed. UFRGS, 2005. 182 p. TOMBOLATO, A.F.C.; COSTA, A.M. Micropropagação de plantas ornamentais. Campina: Instituto Agronômico, 72p, 1998. TONIETTO, S. M.; PERINI, C. B.; TONIETTO, A. Concentrações e composição do meio de Murashige & Skoog. Plant Cellular Culture Micropropagation, Lavras, v.4, n.1, p. 42-47, 2008. TORRES, A.C.; DUVAL, F.G.; RIBEIRO, D.G.; BARROS, A.F.F.; ARAGÃO, F.A.D. Efeito da sacarose, cinetina, isopentenil adenina e zeatina no desenvolvimento de embriões de Heliconia rostrata in vitro. Horticultura Brasileira, Brasília, v.23, n.3, p.789-792, 2005. 56 ULIBARRI, E.A. Sinopsis de Caesalpinia y Hoffmanseggia (Leguminosae-Caesalpinioideae) de Sudamérica. Darwiniana, v.34: 299-348. 1996. VEITCH, N.C., And GRAYER, R.J. Flavonoids and their glycosides, including anthocyanins. Natural Products Reports. v.28, p.1626–1695, 2011. VICENTE, M.A.A.; ALMEIDA,W.A.B.; CARVALHO, Z.S. Multiplicação in vitro e aclimatação de Vernonia condensata Baker. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, v.11, n.2, p.176-183, 2009. VIEIRA, E.L.; CASTRO, P.R.C. Ação de bioestimulante na cultura da soja (Glycine max (L.) Merrill). Cosmópolis: Stoller do Brasil, 2004. 74p. XAVIER, A.; WENDLING, I.; SILVA, R.L. Silvicultura clonal: princípios e técnicas. Viçosa: Editora. UFV, 272 p, 2009. XIMENES, N.C.A. Purificação e Caracterização da Lectina da Vagem da Caesalpinia ferrea (Cf e PL): aplicação biológica. Dissertação de Mestrado em Bioquímica, Universidade Federal do Pernambuco, Recife. 53p, 2004.pt_BR
dc.subject.cnpqBiotecnologiapt_BR
dc.publisher.initialsUEApt_BR
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