DSpace logo

Use este identificador para citar ou linkar para este item: http://repositorioinstitucional.uea.edu.br//handle/riuea/2296
Registro completo de metadados
Campo DCValorIdioma
dc.contributor.authorSilva, Rebecca Tavares e-
dc.date.available2020-03-14-
dc.date.available2020-03-13T14:41:45Z-
dc.date.issued2009-07-04-
dc.identifier.urihttp://repositorioinstitucional.uea.edu.br//handle/riuea/2296-
dc.description.abstractIn Brazilian Amazonian rain forest venomous snake Bothrops atrox (Viperidae) are responsible for 90% of snakebites. Its venom has anticoagulant, proteolytic and hemorrhagic (local and systemic) biological activities. Proteolysis and physicochemical factors (pH changes, temperature, composition of solvent) and the time of the agent's action can affect the three-dimensional structure/conformational state of a native protein, which could lead to the emergence of proteins and peptides with different biological activities and antigenic properties when comparational with original protein. Literature review found no information about these influences on the biological activities and antigenicity of toxins from venom of B. atrox venom. Because of this, this work provided to evaluate the biological activities and antigenicity of toxins from the venom after autoproteolysis at 37°C in different buffer solutions (PBS - 100 mM, pH 7.2 and COLLAGENASE, 50 mM Tris, pH 7.5) incubation time was until one week. The results showed that the molecular profiles, the biological activities and antigenicity of toxins from B. atrox autoproteolisysed second incubation time were strongly influenced by the constituents of the buffer solutions used in the experimental process. Brij 35, a constituent of the buffer COLLAGENASE, protected mainly from proteolytic degradation and freeze-thaw, the PI class metalloproteinase (23 kDa) and P-III (50 kDa) of the venom, preserving the structure / biological function of them, thus influencing the high hemorrhagic activity, toxicity and lethality of the venom. The venom of B. atrox autoproteolysed in PBS showed decay total amount of the toxin as seen in the molecular profiles, and rapid degradation of hemorrhagic metalloproteinase-class P-III, during the time of incubation at 37°C, causes higher decay hemorrhagic, proteolytic, edema and lethal activities. The experimental hyperimmune serum obtained by using as antigen a sample of B. atrox venom autoproteolysed for a week at 37°C in PBS showed satisfactory efficacy neutralizing activity of hemorrhagic, proteolytic and lethal activities from in natura B. atrox venom, and also low toxicity in the process of immunization of laboratory animals. The results suggest the purification of non-toxic peptides/proteins from B. atrox venom proteolysis at 37°C by their own proteases for a week in PBS buffer (100 mM), pH 7.2 evaluating its antigenic activity generating subsidies for vaccine production / specific antivenom against the venom of the Amazonian snake B. atrox.pt_BR
dc.languageporpt_BR
dc.publisherUniversidade do Estado do Amazonaspt_BR
dc.rightsAcesso Abertopt_BR
dc.rightsAtribuição-NãoComercial-SemDerivados 3.0 Brasil*
dc.rights.urihttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/br/*
dc.subjectBothrops atroxpt_BR
dc.subjectautoproteólisept_BR
dc.subjectfatores físico-químicospt_BR
dc.subjecttoxicidadept_BR
dc.subjectsoro hiperimune experimentalpt_BR
dc.subjectvacina antibotrópicapt_BR
dc.titleEfeitos da autoproteólise e de fatores físico-químicos nas atividades biológicas e antigenicidade das toxinas do veneno da serpente amazônica Bothrops atrox (Linnaeus, 1758) “JARARACA”.pt_BR
dc.typeDissertaçãopt_BR
dc.date.accessioned2020-03-13T14:41:45Z-
dc.contributor.advisor1López-Lozano , Jorge Luis-
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/6251525203051399pt_BR
dc.contributor.referee1López-Lozano, Jorge Luis-
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/6251525203051399pt_BR
dc.description.resumoNa Amazônia Brasileira a serpente peçonhenta Bothrops atrox (Viperidae) é responsável por 90% dos acidentes ofídicos. Seu veneno possui atividades anticoagulante, proteolítica e hemorrágica (local e sistêmica). A proteólise e fatores físico-químicos (mudanças de pH, temperatura, composição do solvente) e o tempo de ação do agente, podem afetar a estrutura tridimensional/estado conformacional nativo de uma proteína, o que poderia levar ao surgimento de proteínas e peptídeos com atividades biológicas e antigenicidade diferentes da proteína de origem. Na literatura revisada não foram encontradas informações a cerca destas influências sobre as atividades biológicas e antigenicidade das toxinas do veneno de B. atrox. Devido a isso, o presente trabalho prestou a avaliar as atividades biológicas e a antigenicidade das toxinas do veneno após autoproteólise a 37ºC por até uma semana, em diferentes soluções tampão (PBS - 100 mM, pH 7,2 e COLAGENASE - Tris 50 mM, pH 7,5). Os resultados demonstraram que os perfis moleculares, as atividades biológicas e a antigenicidade das toxinas do veneno de B. atrox autoproteolisado segundo o tempo de incubação foram intensamente influenciados pelos constituintes das soluções tampão utilizadas no processo experimental. Brij 35, constituinte do tampão COLAGENASE, protegeu principalmente da degradação proteolítica e congelamento-descongelamento, as metaloproteinases da classe P-I (23 kDa) e P-III (50 kDa) do veneno, preservando a estrutura/função biológica delas, influenciando dessa forma na elevada atividade hemorrágica, toxicidade e letalidade do veneno. O veneno de B. atrox autoproteolisado em tampão PBS obteve decréssimo quantitativo do total de toxinas conforme verificado no perfil molecular, e a rápida degradação das metaloproteinases hemorrágicas da classe P-III, durante o tempo de incubação a 37°C, causa grande decréssimo das atividades hemorrágica, proteolítica, edematogênica e letal. O soro hiperimune experimental obtido usandose como antígeno a amostra do veneno de B. atrox autoproteolisado por uma semana a 37°C em tampão PBS apresenta satisfatória eficácia neutralizante das atividades hemorrágica, proteolítica e letal contra o veneno in natura de B. atrox, e também baixa toxicidade no processo de imunização de animais de laboratório. Os resultados sugerem a purificação de peptídeos/proteínas atóxicas do veneno de B. atrox proteolisado a 37°C por suas próprias proteases por uma semana em tampão PBS (100 mM), pH 7,2 avaliando sua atividade antigênica gerando subsídios para produção de vacina/soro antibotrópico específico contra o veneno da serpente amazônica B. atrox.pt_BR
dc.publisher.countryBrasilpt_BR
dc.publisher.programPrograma de pós-graduação em biotecnologia e recursos naturais da Amazôniapt_BR
dc.relation.referencesABBAS, A. K. Imunologia celular e molecular. 3. ed. Rio de Janeiro: Editora Revinter, 2000. ABBAS, A. K. Imunologia celular e molecular. 4. ed. Rio de Janeiro: Editora Revinter, 2003. AHMAD, E. et al. The Minimal Structural Requirement of Concanavalin A that Retains Its Functional Aspects. J. Biochem. 142; 307–315, 2007. ALBERTS, B., BRAY, D. LEWIS, J., RAFF, M., ROBERTS, K., WATSON, J. D. Biologia molecular da célula. 4. ed. Porto Alegre: Artes Médicas, 2004. AMABIS, J. M. & MARTHO, G. R. Biologia dos organismos. São Paulo: Editora Moderna, 2004. ANCHORDOQUY, T. J. Maintenance of Quaternary Structure in the Frozen State Stabilizes Lactate Dehydrogenase during Freeze–Drying. Archives of Biochemistry and Biophysics 390, 35-41, 2001. BÉRNILS, R. S. (org.). Brazilian reptiles – List of species. Acessado em http://www.sbherpetologia.org.br/. Sociedade Brasileira de Herpetologia. 10/07/2009. BIER, O. Imunologia: básica e aplicada. 5. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2003. BLUMENKRANTZ, N., ASSAD, R., PETERKOFSKY B. Characterization of Collagen Hydroxylysyl Glycosyltransferases As Mainly Intramembranous Microsomal Enzymes. J. Biological Chemistry 259, 854-859,1984. BOLAÑOS, R. Serpientes, Venenos y Ofidismo en Centro America. ed. Universitária de Costa Rica, San José, 1984. BRADFORD, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72, 248,1976. BRASIL. Manual de diagnóstico e Tratamento de Acidentes por Animais Peçonhentos. Ministério da Saúde, 1998. BRASIL. Ministério da Saúde. Fundação Nacional de Saúde. Manual de diagnóstico e tratamento de acidentes por animais peçonhentos. 2 ed. Brasília: Fundação Nacional de Saúde, 2001. CALICH, V & VAZ, C. Imunologia. Rio de Janeiro: Editora REVINTER, 2001. CAMPBELL, M. K. BIOQUÍMICA: EDIÇÃO UNIVERSITÁRIA. 3. ed. Editora: Artmed, 2001. 97 CANTER, H. M., SANTOS, M. F., SALOMÃO, M. G., PUORTO, G., PEREZ JUNIOR, J. A. Animais Peçonhentos: serpentes. 2008. CASTRO, I. Estudo da toxicidade das peçonhas crotálicas e botrópicas, no acidente ofídico, com ênfase a toxicidade renal. O MUNDO DA SAÚDE. São Paulo, 2006. CLISSA, P. B. Caracterização do efeito da jararagina sobre a produção e liberação de citocinas pró-inflamatorias em modelo murino. Tese (Doutorado) - Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo. São Paulo, 2002. EDITORIAL. From genome to vaccine: new immunoinformatics tools for vaccine design. Methods 34; 425–428, 2004. FEILI-HARIRI, M., FALKNER, D. H., MOREL, P. A. Polarization of naïve T cells into Th1 or Th2 by distinct cytokine-driven murine dentritic cell populations implications for immunotherapy. J Leukocyte Biol. 78; 656-664, 2005. FERNANDES, C. M. Inflammatory effects of BaP1 a metalloproteinase isolated from Bothrops asper snake venom: leukocyte recruitment and release of cytokines. Toxicon 47; 549–559, 2006. FINNEY, D. J. Probit analysis. 3 ed. Cambridge University Press, 1971. FOTI, A. G. et al. Enhancing Effect of Surfactant and Protein on Hydrolysis of Thymolphthalein Monophosphate by Purified Prostatic Acid Phosphatase. CLIN. CHEM. 21/12, 1761-1765, 1975. FOX J. W. & SERRANO S. M. Insights into and speculations about snake venom metalloproteinase (SVMP) synthesis, folding and disulfide bond formation and their contribution to venom complexity. The FEBS journal 275(12); 3016-30, 2008. FOX J. W. & SERRANO S. M. Timeline of key events in snake venom metalloproteinase research. Journal of Proteomics 72; 200-209, 2009. FOX, J. W. & SERRANO, M. T. Scructural considerations of the snake venom metalloproteinases, key members of the M12 reprolysin family of metalloproteinases. Toxicon 45; 969-985, 2005. FRAGA, R. S. & NEUMANN, J. Complexo de Histocompatibilidade Principal. In: SCROFERNEKER, M. L., POHLMANN, P. R. (Ed.). Imunologia básica e aplicada. Porto Alegre: Sagra Luzzatto, cap.7, p.110-121, 1998. FRANÇA, F. 0. S. & FAN, H. W. In: SCHVARTSMAN, S. Plantas Venenosas e Animais Peçonhentos. 2. ed. São Paulo: Sarvier, 1992. GEBICKA L. & JURGAS-GRUDZINSKA M. Activity and Stability of Catalase In: Nonionic Micellar and Reverse Micellar Systems. Z. Naturforsch 59c, 887-891, 2004. 98 GOMIS-RUTH, F. X. et al. Crystal structures, spectroscopic features, and catalytic properties of cobalt(II), copper(II), nickel(II), and mercury(II) derivatives of the zinc endopeptidase astacin. A correlation of structure and proteolytic activity. J. Biol. Chem. 269; 17111–17117,1994. GROOT, A. S. & MOISE l. New tools, new approaches and new ideas for vaccine development. Expert Rev. Vaccines 6(2); 125-127, 2007. GUÉRCIO, R. A. P. et al. Ontogenetic variations in the venom proteome of the Amazonian snake Bothrops atrox. Proteome Science 4:11, 2006. GUTIÉRREZ, J.M., et al. Skeletal muscle necrosis and regeneration after injection of BaH1, a hemorrhagic metalloproteinase isolated from the venom of the snake Bothrops asper (Terciopelo). Exp Mol Pathol 62; 28-41, 1995. GUTIERRÉZ, J M. & LOMONTE B. Local Tissue Damage Induced by Bothrops Snake Venoms. A Review. Memórias do instituto Butantan, 51(4): 211-223, 1989. GUTIERREZ, J. M. & LOMONTE, B. Phospholipase A2 myotoxins from Bothrops snake venoms. Toxicon, 33(11): 1405-1424. 1995. HILLGREN A. & ALDÉN M. A comparison between the protection of LDH during freeze-thawing by PEG 6000 and Brij 35 at low concentrations. International Journal of Pharmaceutics 244; 137-149, 2002. HOSHINO E. & TANAKA A. Enhancement of enzymatic catalysis of Bacillus amyloliquefaciens α-amylase by nonionic surfactant micelles. J. Surfact. Deterg.6; 299-303, 2003. HUANG H.Q. et al. Synthesis and bioactivities of two multiple antigen peptides as potential vaccine against Schistosoma. Bioorg. Med. Chem. 15; 2415–2419, 2005. IWANAGA S & SUZUKI T. Enzimes in snake venom. In: Snake Venom, ed lee, C Y. Berlim: Springer-verlag; 61-158, 1979. ISHIDA, I. et al. Identification of human T-cell epitopes and highly immunogenic analog peptides on the non-typeable Haemophilus influenzae P6 outer membrane protein. Clinical immunology 121; 90-99, 2006. JANEWAY, C. Imunobiologia: O sistema imune na saúde e na doença. 6. ed. Artmed. 2006. KLINGUER-HAMOUR, C. et al. Synthesis, refolding and protective immune responses of a potential antigen for human Respiratory Syncytial Virus vaccine. J. Peptide Res. 62; 27–36, 2003. LAEMMLI, U.K. Cleavage off structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, v. 227, p. 680-685, 1970. 99 LIN, H. H. et al. Evaluation of MHC class I peptide binding prediction servers: Applications for vaccine research. BMC Immunology 9:8, 2008. LOMONTE, B., MORENO, E., TARKOWSKI, A., HANSON, L.A., MACCARANA, M., Neutralizing interaction between heparins and myotoxin II, a lysine 49 phospholipase A2 from Bothrops asper snake venom. Identification of a heparinbinding and cytolytic toxin region by the use of synthetic peptides and molecular modeling. J Biol Chem; 269: 29867-73, 1994. LÓPEZ-LOZANO, J. L. et al. Ontogenetic variation of metalloproteinases and plasma coagulant activity in venoms of wild Bothrops atrox specimens from Amazonian rain forest. Toxicon 40; 997-1006, 2002. LÓPEZ-LOZANO, J. L. Venenos de serpentes da Amazônia – Propriedades e relações moleculares, fisiológicas e taxonômicas. 180f. Faculdade de Ciências Biológicas, Universidade Federal de Brasília, Brasília, 2002. MACHADO, A. et al. Sínteses química e enzimática de peptídeos: princípios básicos e aplicações. Quím. Nova 27, 2004. MARKLAND, F.S. Snake venoms and the hemostatic system. Review.Toxicon 36(12);1749-800, 1998. MARQUES-PORTO, R. A., LEBRUN I. B., PIMENTA, D. C. Self-proteolysis regulation in the Bothrops jararaca venom:The metallopeptidases and their intrinsic peptidic inhibitor. Comparative Biochemistry and Physiology, 147; 424–433, 2008. MCLOUGHLIN D. J., SHAHIED I. I., MCQUARRIE R. Detergents effects upon the isozymes of cytoplasmatic glycerol 3-phosphate dehydrogenase. Arch.Biochem. Biophys 188; 78-82, 1978. MEDINA P. & BARESI L. Rapid identification of gelatin and casein hydrolysis using TCA. Journal of Microbiological Methods 69; 391-393, 2007. MELGAREJO, A. R. Serpentes peçonhentas d Brasil. In. Cardoso JLC, França FOS, Wen FH, Málaque CMS, Haddad júnior V. Animais peçonhentos no Brasil: biologia, clínica e terapêutica dos acidentes. São Paulo: Savier; 33-61, 2003. MOURA-DA-SILVA, A. M. et al. Collagen binding is a key factor for the hemorrhagic activity of snake venom metalloproteinases. Biochimie 90; 484-492, 2008. MOURA-DA-SILVA, A. M. et al. Evidence for heterogeneous forms of the snake venom metalloproteinase jararhagin: a factor contributing to snake venom variability. Archives of Biochemistry and Biophysics 409; 395-401, 2003. NASCIMENTO, G. N. et al. Contribution of mast cells to the oedema induced by Bothrops moojeni snake venom and a pharmacological assessment of the inflammatory mediators involved. Toxicon, 2009.08.009. 100 NASCIMENTO, N. & ROGERO, J. R. Atenuação da toxicidade de venenos ofídicos por meio da radiação ionizante. Biotecnologia ciência & desenvolvimento, v. 1, n. 2, p. 24-26, 1997. NARDIN, E. H. Synthetic malaria peptide vaccine elicits high levels of antibodies in vaccinees of defined HLA genotypes. The Journal of infectious diseases 182; 1486-1496, 2000. NEIVA, M. Transcriptome analysis of the Amazonian viper Bothrops atrox venom gland using expressed sequence tags (ESTs). Toxicon 53; 427-436, 2009. NELSON, D.L. & COX, M.M., Lehninger Principles of Biochemistry. 4. ed. Sarvier, Wisconsin, 2007. NORRIS R. Venom Poisoning in North American Reptiles. In Campbell JA, Lamar WW. 2004. The Venomous Reptiles of the Western Hemisphere. Comstock Publishing Associates, Ithaca and London. 870 pp. 1500 plates p.489-506, 2004 OBEID, O.E. et al. Protection against morbillivirus-induced encephalitis by immunisation with a rationally designed synthetic peptide vaccine containing B- and T-cell epitopes from the fusion protein of measles virus. J. Virol. 69; 1420–1428, 1995. OLSZEWSKA, W. & STEWARD, M. W. Nasal delivery of epitope based vaccines. Advanced Drug Delivery Reviews 51; 161–171, 2001. OLSZEWSKA, W. et al. Immune responses and protection induced by mucosal and systemic immunization with recombinant measles nucleoprotein in a mouse model of measles-induced encephalitis. Arch. Virol. 146; 293–299, 2000. PARDAL, P.P.O. & YUKI, R.N. Acidentes por animais peçonhentos: manual de rotinas. Belém: ed. Universitária, 40p, 2000. PARHAM, P. O Sistema Imune. Porto Alegre: Editora Artmed, 2001. PARTIDOS C. D., STANLEY, C., STEWARD, M. The influence of orientation and number of copies of T and B cell epitopes on the specificity and affinity of antibodies induced by chimeric peptides. Eur. J. Immunol. 22; 2675–2680, 1992. PARTIDOS, C. D. & STEWARD, M.W. The effects of a flanking sequence on the immune response to a B and a T cell epitope from the fusion protein of measles virus. J. Gen. Virol. 73; 1987–1994, 1992. PEAKMAN, M. & VERGANI, D. Imunologia Básica e Clínica. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 1999. PHELAN, D. L. The HLA System. In: HARMENING, D. M. (Ed.). Modern blood banking and transfusion pratices. 4. ed., cap. 22. Philadelphia, 1999. 101 PINHO F. M. O., OLIVEIRA E. S., FALEIROS F. Acidente ofídico no Estado de Goiás. Rev. Assoc. Med. Bras., 2004. ROITT, I. M. & DELVES, P. J. Fundamentos de imunologia. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2004. ROSENFELD, G. Symptomatology, pathology and treatment of snake bites in South América, in W B., E B. (eds); Venomous Animals and their Venoms. New York, Academic Press, 345-84, 1971. RUCAVADO A., NUNEZ J., GUTIÉRREZ J. M. Blister formation and skin damage induced by BaP1, a haemorrhagic metalloproteinase from the venom of the snake Bothrops asper. Int J Exp Pathol 79; 245-254, 1998. RUCAVADO, A. et al. Increments in cytokines and matrixmetalloproteinases in skeletal muscle after injection of tis-sue-damaging toxins from the venom of the snake Bothrops asper. Mediators Inflamm 11; 121-128, 2002. RUCAVADO, A., et al. Characterization of the local tissuedamage induced by LHF-II, a metalloproteinase with weakhemorrhagic activity isolated from Lachesis muta muta snake venom. Toxicon 37; 1297-1312, 1999. SAVELLI, G., SPRETI, N., PROFIO, P. Enzyme activity and stability control by amphiphilic self-organizing systems in aqueous solutions. Current Opinion in Colloid & Interface Science 5; 111-117, 2000. SCHÄGGER, H. Tricine-SDS-PAGE Protocol. Nature Protocols, v. 1, n. 1, p. 16-22, 2006. SCHARON, J. Imunologia Básica. Rio de Janeiro: Editora Guanabara Koogan, 267p. 2000. SCROFERNEKER, M. L. & POHLMANN, P. R. Imunologia Básica e Aplicada. Editora Sagra Luzzatto. Porto Alegre, 578p. 1998. SILVA, M. V. Serpentes do estado do Acre: riqueza, dieta, etno-conhecimento e acidentes ofídicos. 2006. SOERENSEN, B. Acidentes por Animais Peçonhentos Editora: Atheneu. 2000. SOUSA, J. R. F., MONTEIRO, R. Q., CASTRO, H. C., ZINGALI, R. B., Proteolytic action of Bothrops jararaca venom upon its own constituents. Toxicon 39; 787-792, 2001. SOUZA, A. R. B. & MUNIZ, E. C. Jararacas e Acidentes Ofídicos no Brasil: uma atualização simplificada. Fundação de Medicina Tropical - FMT/IMT - AM, 2000. STEELE, J. T., ALLEN, S. D., KAUMAYA, P. T. P. Cancer immunotherapy with rational designed synthetic peptides In: Edited by KASTIN, A. J. Handbook of biologically active peptides. Chapter 21; 491-498, 2006. 102 TEIXEIRA C. F. P. et al. Inflammatory effects of snake venom metalloproteinases. Mem. Inst. Oswaldo Cruz 100; 181-184, 2005. TEIXEIRA, C. et al. Inflammation induced by Bothrops asper venom. Toxicon, 05.026.2009. THEAKSTON, R. D. G. The application of immunoassay techniques, including Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), to snake venom research. Toxicon 21: 341-352, 1983. TOWBIN, H., STAEHELIN, T., GORDON, J. Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: procedure and some applications. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, v. 76, p. 4350-4354, 1979. TU, A. T. Overview of snake venom chemistry. Advances in Experimental Medicine and Biology, 391: 37-62. 1996. WAGSTAFF, S. C. et al. Bioinformatics and multiepitope DNA immunization to design rational snake antivenom. PLoS Med 3(6): 2006. WANG, C. Y. W., et al. Synthetic IgE peptide vaccine for immunotherapy of allergy. Vaccine 21; 1580–1590, 2003. WAGNER, M. W. & DISIS, M. L. Peptides vaccines for cancer treatment. In: Edited by KASTIN, A. J. Handbook of biologically active peptides. Chapter 21; 491-498, 2006. ZAHA, A., FERREIRA, H. B., PASSAGLIA, L. M. P. Biologia Molecular Básica. 3. ed. Porto Alegre, Editora Mercado Aberto, 2003.pt_BR
dc.subject.cnpqBiotecnologiapt_BR
dc.publisher.initialsUEApt_BR
Aparece nas coleções:DISSERTAÇÃO - MBT Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia e Recursos Naturais da Amazônia



Este item está licenciada sob uma Licença Creative Commons Creative Commons